Evaluación de métodos moleculares y microscópicos para la detección de Cryptosporidium spp. (apicomplexa – cryptosporidiidae).
Titulo:

Evaluación de métodos moleculares y microscópicos para la detección de Cryptosporidium spp. (apicomplexa – cryptosporidiidae).
.

Sumario:

Introducción. La criptosporidiosis es una enfermedad emergente causada por protozoarios del género  Cryptosporidium, afecta un amplio rango de vertebrados incluyendo al hombre, su prevalencia oscila entre el 4-6% en centro y sur América y puede llegar a causar la muerte en pacientes inmunosuprimidos, por lo que es considerada un problema de salud pública en todo el mundo. Se hace necesario implementar y evaluar estrategias de detección y tipificación de las distintas especies de Cryptosporidium, para adoptar medidas de control y seguimiento. Objetivo. Realizar una comparación de métodos microscópicos y moleculares para la detección y tipificación de las especies  de Cryptosporidium, con el fin de utili... Ver más

Guardado en:

Biosalud

1657-9550

2462-960X

Ocampo Gallego, Ricardo José

Cardozo Duque, Luz Adriana

López Garnert, Germán Ariel

Álvarez, María Elena

Pérez, Jorge Enrique

Rivera Páez, Fredy Arvey

UNIVERSIDAD DE CALDAS

10

2022-03-17

19

29

Colombia

Cryptosporidium spp.

rADN

Hsp70

COWP

Ziehl-Neelsen

Revista Biosalud - 2011

info:eu-repo/semantics/openAccess

http://purl.org/coar/access_right/c_abf2

id oai:revistasojs.ucaldas.edu.co:article_4749
record_format ojs
spelling Evaluación de métodos moleculares y microscópicos para la detección de Cryptosporidium spp. (apicomplexa – cryptosporidiidae).
Evaluation of molecular and microscopic methods for detection of Cryptosporidium spp. (apicomplexa –cryptosporidiidae)
Introducción. La criptosporidiosis es una enfermedad emergente causada por protozoarios del género  Cryptosporidium, afecta un amplio rango de vertebrados incluyendo al hombre, su prevalencia oscila entre el 4-6% en centro y sur América y puede llegar a causar la muerte en pacientes inmunosuprimidos, por lo que es considerada un problema de salud pública en todo el mundo. Se hace necesario implementar y evaluar estrategias de detección y tipificación de las distintas especies de Cryptosporidium, para adoptar medidas de control y seguimiento. Objetivo. Realizar una comparación de métodos microscópicos y moleculares para la detección y tipificación de las especies  de Cryptosporidium, con el fin de utilizar aquel de mayor sensibilidad en la detección del parásito en muestras de agua. Materiales y métodos. La detección y tipificación de Cryptosporidium spp., en muestras fecales y de agua, usando inicialmente un método de concentración tanto para las heces como para el agua (formol-éter y el método de floculación inorgánica con carbonato de calcio); la identificación del parásito se realizó por la tinción de Ziehl-Neelsen y la amplificación por Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR) de regiones del ADN ribosomal, de genes que codifican para la proteína Hsp70 y del gen que codifica para la proteína de la pared del ooquiste de Cryptosporidium (COWP). La tipificación se realizó por medio de digestión con las enzimas de restricción  SspI, VspI y RsaI. Resultados. La tinción de Ziehl-Neelsen, comprobó la presencia de Cryptosporidium spp., en 10 de las 168 muestras analizadas (humanos, terneros, perros y conejos), la tipificación por PCR, confirmaron 15 muestras positivas para C. parvum y una para C. hominis. Conclusiones. Se demuestra la sensibilidad de la detección de Cryptosporidium, por PCR y su utilidad en el diagnóstico, al registrar la presencia de dos especies del parásito circulando en muestras del municipio de Manizales.
Introduction. Cryptosporidiosis is an emerging disease caused by protozoa of  the  Cryptosporidium genus, which affects a wide range of vertebrates, including humansIts prevalence ranges from 4%-6% in Central and South America and can even cause death in immunosuppressed patients reason why it is considered a public health problem worldwide. It is necessary to implement and evaluate strategies for detection and typification of different Cryptosporidium species,to adopt control measures and monitoring. Objective. To perform a comparison between microscopic and molecular methods for the detection and typification of Cryptosporidium species with the purpose of using the most sensitive method in the detection of Cryptosporidium oocysts in water samples. Materials and methods. Detection and typification of Cryptosporidium spp, in feces and water samples were done initially using a concentration method for both feces and water (Formol-ether and inorganic flocculation method with Calcium carbonate); the parasite identification was carried out using the Ziehl-Nelseen staining and the Polymerase Chain Reaction PCR amplification of ribosomal ADN regions, of gens codified for Hsp70 protein and the gen that codifies for the Cryptosporidium oocyst wall protein (COWP). The typification was carried out by digestion with restriction enzymes SspI, RsaI and VspI. Results. The Ziehl-Neelsen staining, confirmed the presence of Cryptosporidium  spp., in 10 of the 168 samples tested (humans, calves, dogs and rabbits), the PCR typification, confirmed 15 positive samples for C. parvum and one for C. hominis. Conclusion. The sensitivity of detection of  Cryptosporidium by PCR and its utility in the diagnosis is shown, registering the presence of two species of the parasite circulating in samples taken in the municipality of Manizales.
Ocampo Gallego, Ricardo José
Cardozo Duque, Luz Adriana
López Garnert, Germán Ariel
Álvarez, María Elena
Pérez, Jorge Enrique
Rivera Páez, Fredy Arvey
Cryptosporidium spp.
rADN
Hsp70
COWP
Ziehl-Neelsen
Cryptosporidium spp.
rDNA
Hsp70
COWP
Ziehl-Neelsen
10
1
Núm. 1 , Año 2011 : Enero - Junio
Artículo de revista
Journal article
2022-03-17T00:36:58Z
2022-03-17T00:36:58Z
2022-03-17
application/pdf
Universidad de Caldas
Biosalud
1657-9550
2462-960X
https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/biosalud/article/view/4749
https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/biosalud/article/view/4749
spa
https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/
Revista Biosalud - 2011
19
29
Avery B, Lemley A, Hornsby A. Cryptosporidium: Un Patógeno Transmitido por el Agua. Rev. University of Florida 2003; 54:11-17.
Tzipori S, Ward H. Cryptosporidiosis: biology, pathogenesis and disease. Microbes Infect 2002; 4:1047-1058.
Fahey T. Cryptosporidiosis. Prim Care Update Ob Gyns 2003; 10:75-80.
Bogitsh BJ, Cheng TC. Human Parasitology. 2 ed. San Diego: Academic Press; 1998. p. 33.
Fayer R. Cryptosporidium: a water-borne zoonotic parasite. Vet Parasitol 2004; 126:37-56.
Chen XM, Keithly JS, Paya CV, LaRusso NF. Cryptosporidiosis. N Engl J Med 2002; 346:1723-1731.
Rodríguez JC, Royo G. Cryptosporidium y criptosporidiosis. Bol Control Calidad SEIMC 2001; 13:31-35.
Manual de las pruebas de diagnóstico y de las vacunas para los animales terrestres [Internet]. Disponible en: http://www.oie.int/esp/normes/mmanual/pdf_es/2.10.09_cryptoporidiosis.pdf Consultado Marzo de 2009.
Resolución Número 2115 de 2007. Diario Oficial No. 46.679. Ministerio de Protección Social, Ministerio de Ambiente, Vivienda y Desarrollo Territorial.
Ritchie LS. An ether sedimentation technique for routine stool examinations. Bull. U.S. Army med. 1948; 8:326.
Heariksen SA, Pohlenz JFL. Staining of Cryptosporidia by a modified Ziehl-Neelsen technique. Acta Vet. Scand. 1981; 22:594.
Casemore DP, Armstrong M, Jackson B. Screening for Cryptosporidium in stools. Lanced 1984; 1:734-735.
Gonçalves EMN, Araújo RS, Orban M, Matté GR, Matté MH, Corbett CEP. Protocol for DNA extraction of Cryptosporidium spp. oocysts in fecal samples. Inst. Med. trop. S. Paulo. 2008; 50:165-167.
Xiao L, Alderisio K, Limor J, Royer M, Lal AA. Identification of species and sources of Cryptosporidium oocysts in storm waters with a small-subunit rRNA-based diagnostic and genotyping tool. Appl Environ Microbiol 2000; 66:5492-5498.
Morgan UM, Monis P, Xiao L, Limor J, Sulaiman I, Raidal S, et al. Molecular and phylogenetic characterization of Cryptosporidium from birds. International journal for Parasitology 2001; 31:289-296.
Spano F, Putignani L, Mclauchlin J, Casemore DP, Crisanti A. PCR-RFLP analysis of the Cryptosporidium oocyst wall protein (COWP) gene discriminates between C. wrairi and C. parvum, and between C. parvum isolates of human and animal origin. FEMS Microbiol Lett. 1997; 150:209-217.
Sanguinetti CJ, Dias N, Simpson A. Rapid silver staining and recovery of PCR products separate on polycrylamide gels. Biotechniques 1994; 17:914-921.
APHA-AWWA-WPCF. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater. 16 ed. Washington, USA; 1985.
Vesey G, Slade JS, Byrne M, Shepherd K, Fricker CR. A new method for the concentration of Cryptosporidium oocysts from water. J. Appl. Bacteriol. 1993; 75:82-86.
Alonso M, Corcuera M, Roldán M, Picazo A, Gómez F. Modificación de la técnica de Ziehl-Neelsen para la detección de micobacterias con la utilización de microondas. Técnicas en Patología 1996; 29:33-35.
Arrowoodt MJ, Sterling MM. Comparison of conventional staining methods and Monoclonal AntibodyBased methods for Cryptosporidium Oocyst Detection. J. Clin. Microbiol.1989; 27:1490-1495.
Le Blancq SM, Khramtsov NV, Zamani F, Upton SJ, WU TW. Ribosomal RNA gene organization in Cryptosporidium parvum. Mol Biochem Parasitol 1997; 90:463-478.
Piper M, Bankier AT, Dear PH. A happy map of Cryptosporidium parvum. Genome Res. 1998; 8:1299-307.
Weber R, Bryan RT, Bishop HS, Walquist SP, Sullovan J, Juranek D. Threshold of detection of Cryptosporidium oocysts in human stool specimens: evidence for low sensitivity of current methods. J. clin. Microbiol. 1991; 29:1323-1327.
Johnson DW, Pieniazek NJ, Griffin DW, Misener L, Rose JB. Development of a PCR protocol for sensitive detection of Cryptosporidium in water samples. Appl. Environ. Microbiol. 1995; 61:3849-3855.
Webster KA, Smith HV, Giles M, Dawson L, Robertson LJ. Detection of Cryptosporidium parvum oocysts in faeces: comparison of conventional coproscopical methods and the polymerase chain reaction. Veterinary Parasitology 1996; 61:5-13.
Arango M, Rodríguez D, Prada N. Frecuencia de Cryptosporidium spp. en materia fecal de niños entre un mes y trece años en un hospital local colombiano. Colomb. Med. 2006; 37(2):121-125.
Rivera O, Vásquez LR. Cryptosporidium spp.: informe de un caso clínico en Popayán, Cauca. Rev Col Gastroenterol 2006; 21(3):125-129.
Rodríguez E, Manrique-Abril F, Pulido M, Ospina-Díaz J. Frecuencia de Cryptosporidium spp. en caninos de la ciudad de Tunja, Colombia. Rev. MVZ Córdoba 2009; 14(2):1697-1704.
Fayer R, Morgan U, Upton SJ. Epidemiology of Cryptosporidium: Transmission, detection and identification. Int J Parasitol 2000; 30:1305-1322.
Keshavarz A, Athari A, Haghighi A, Kazami B, Abadi A. Genetic characterization of Cryptosporidium spp. Among children with diarrhea in Tehran and Qazvin provinces, Iran. Iranian J parasitol 2008; 3:30-36.
Trotz-Williams LA, Martin DS, Gatei W, Cama V, Peregrine AS, Martin SW, et al. Genotype and subtype analyses of Cryptosporidium isolates from dairy calves and humans in Ontario. Parasitology research 2006; 99:346-352.
Carey CM, Lee H, Trevors JT. Biology, persistence and detection of Cryptosporidium parvum and Cryptosporidium hominis oocyst. Water research 2004; 38:818-862.
Fayer R, Xiao L. Cryptosporidium y cryptosporidosis. 2 ed. Taylor & Francis group editorial; 2008.
https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/biosalud/article/download/4749/4334
info:eu-repo/semantics/article
http://purl.org/coar/resource_type/c_6501
http://purl.org/coar/resource_type/c_2df8fbb1
http://purl.org/redcol/resource_type/ART
info:eu-repo/semantics/publishedVersion
http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85
info:eu-repo/semantics/openAccess
http://purl.org/coar/access_right/c_abf2
Text
Publication
institution UNIVERSIDAD DE CALDAS
thumbnail https://nuevo.metarevistas.org/UNIVERSIDADDECALDAS/logo.png
country_str Colombia
collection Biosalud
title Evaluación de métodos moleculares y microscópicos para la detección de Cryptosporidium spp. (apicomplexa – cryptosporidiidae).
spellingShingle Evaluación de métodos moleculares y microscópicos para la detección de Cryptosporidium spp. (apicomplexa – cryptosporidiidae).
Ocampo Gallego, Ricardo José
Cardozo Duque, Luz Adriana
López Garnert, Germán Ariel
Álvarez, María Elena
Pérez, Jorge Enrique
Rivera Páez, Fredy Arvey
Cryptosporidium spp.
rADN
Hsp70
COWP
Ziehl-Neelsen
Cryptosporidium spp.
rDNA
Hsp70
COWP
Ziehl-Neelsen
title_short Evaluación de métodos moleculares y microscópicos para la detección de Cryptosporidium spp. (apicomplexa – cryptosporidiidae).
title_full Evaluación de métodos moleculares y microscópicos para la detección de Cryptosporidium spp. (apicomplexa – cryptosporidiidae).
title_fullStr Evaluación de métodos moleculares y microscópicos para la detección de Cryptosporidium spp. (apicomplexa – cryptosporidiidae).
title_full_unstemmed Evaluación de métodos moleculares y microscópicos para la detección de Cryptosporidium spp. (apicomplexa – cryptosporidiidae).
title_sort evaluación de métodos moleculares y microscópicos para la detección de cryptosporidium spp. (apicomplexa – cryptosporidiidae).
title_eng Evaluation of molecular and microscopic methods for detection of Cryptosporidium spp. (apicomplexa –cryptosporidiidae)
description Introducción. La criptosporidiosis es una enfermedad emergente causada por protozoarios del género  Cryptosporidium, afecta un amplio rango de vertebrados incluyendo al hombre, su prevalencia oscila entre el 4-6% en centro y sur América y puede llegar a causar la muerte en pacientes inmunosuprimidos, por lo que es considerada un problema de salud pública en todo el mundo. Se hace necesario implementar y evaluar estrategias de detección y tipificación de las distintas especies de Cryptosporidium, para adoptar medidas de control y seguimiento. Objetivo. Realizar una comparación de métodos microscópicos y moleculares para la detección y tipificación de las especies  de Cryptosporidium, con el fin de utilizar aquel de mayor sensibilidad en la detección del parásito en muestras de agua. Materiales y métodos. La detección y tipificación de Cryptosporidium spp., en muestras fecales y de agua, usando inicialmente un método de concentración tanto para las heces como para el agua (formol-éter y el método de floculación inorgánica con carbonato de calcio); la identificación del parásito se realizó por la tinción de Ziehl-Neelsen y la amplificación por Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR) de regiones del ADN ribosomal, de genes que codifican para la proteína Hsp70 y del gen que codifica para la proteína de la pared del ooquiste de Cryptosporidium (COWP). La tipificación se realizó por medio de digestión con las enzimas de restricción  SspI, VspI y RsaI. Resultados. La tinción de Ziehl-Neelsen, comprobó la presencia de Cryptosporidium spp., en 10 de las 168 muestras analizadas (humanos, terneros, perros y conejos), la tipificación por PCR, confirmaron 15 muestras positivas para C. parvum y una para C. hominis. Conclusiones. Se demuestra la sensibilidad de la detección de Cryptosporidium, por PCR y su utilidad en el diagnóstico, al registrar la presencia de dos especies del parásito circulando en muestras del municipio de Manizales.
description_eng Introduction. Cryptosporidiosis is an emerging disease caused by protozoa of  the  Cryptosporidium genus, which affects a wide range of vertebrates, including humansIts prevalence ranges from 4%-6% in Central and South America and can even cause death in immunosuppressed patients reason why it is considered a public health problem worldwide. It is necessary to implement and evaluate strategies for detection and typification of different Cryptosporidium species,to adopt control measures and monitoring. Objective. To perform a comparison between microscopic and molecular methods for the detection and typification of Cryptosporidium species with the purpose of using the most sensitive method in the detection of Cryptosporidium oocysts in water samples. Materials and methods. Detection and typification of Cryptosporidium spp, in feces and water samples were done initially using a concentration method for both feces and water (Formol-ether and inorganic flocculation method with Calcium carbonate); the parasite identification was carried out using the Ziehl-Nelseen staining and the Polymerase Chain Reaction PCR amplification of ribosomal ADN regions, of gens codified for Hsp70 protein and the gen that codifies for the Cryptosporidium oocyst wall protein (COWP). The typification was carried out by digestion with restriction enzymes SspI, RsaI and VspI. Results. The Ziehl-Neelsen staining, confirmed the presence of Cryptosporidium  spp., in 10 of the 168 samples tested (humans, calves, dogs and rabbits), the PCR typification, confirmed 15 positive samples for C. parvum and one for C. hominis. Conclusion. The sensitivity of detection of  Cryptosporidium by PCR and its utility in the diagnosis is shown, registering the presence of two species of the parasite circulating in samples taken in the municipality of Manizales.
author Ocampo Gallego, Ricardo José
Cardozo Duque, Luz Adriana
López Garnert, Germán Ariel
Álvarez, María Elena
Pérez, Jorge Enrique
Rivera Páez, Fredy Arvey
author_facet Ocampo Gallego, Ricardo José
Cardozo Duque, Luz Adriana
López Garnert, Germán Ariel
Álvarez, María Elena
Pérez, Jorge Enrique
Rivera Páez, Fredy Arvey
topicspa_str_mv Cryptosporidium spp.
rADN
Hsp70
COWP
Ziehl-Neelsen
topic Cryptosporidium spp.
rADN
Hsp70
COWP
Ziehl-Neelsen
Cryptosporidium spp.
rDNA
Hsp70
COWP
Ziehl-Neelsen
topic_facet Cryptosporidium spp.
rADN
Hsp70
COWP
Ziehl-Neelsen
Cryptosporidium spp.
rDNA
Hsp70
COWP
Ziehl-Neelsen
citationvolume 10
citationissue 1
citationedition Núm. 1 , Año 2011 : Enero - Junio
publisher Universidad de Caldas
ispartofjournal Biosalud
source https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/biosalud/article/view/4749
language spa
format Article
rights https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/
Revista Biosalud - 2011
info:eu-repo/semantics/openAccess
http://purl.org/coar/access_right/c_abf2
references Avery B, Lemley A, Hornsby A. Cryptosporidium: Un Patógeno Transmitido por el Agua. Rev. University of Florida 2003; 54:11-17.
Tzipori S, Ward H. Cryptosporidiosis: biology, pathogenesis and disease. Microbes Infect 2002; 4:1047-1058.
Fahey T. Cryptosporidiosis. Prim Care Update Ob Gyns 2003; 10:75-80.
Bogitsh BJ, Cheng TC. Human Parasitology. 2 ed. San Diego: Academic Press; 1998. p. 33.
Fayer R. Cryptosporidium: a water-borne zoonotic parasite. Vet Parasitol 2004; 126:37-56.
Chen XM, Keithly JS, Paya CV, LaRusso NF. Cryptosporidiosis. N Engl J Med 2002; 346:1723-1731.
Rodríguez JC, Royo G. Cryptosporidium y criptosporidiosis. Bol Control Calidad SEIMC 2001; 13:31-35.
Manual de las pruebas de diagnóstico y de las vacunas para los animales terrestres [Internet]. Disponible en: http://www.oie.int/esp/normes/mmanual/pdf_es/2.10.09_cryptoporidiosis.pdf Consultado Marzo de 2009.
Resolución Número 2115 de 2007. Diario Oficial No. 46.679. Ministerio de Protección Social, Ministerio de Ambiente, Vivienda y Desarrollo Territorial.
Ritchie LS. An ether sedimentation technique for routine stool examinations. Bull. U.S. Army med. 1948; 8:326.
Heariksen SA, Pohlenz JFL. Staining of Cryptosporidia by a modified Ziehl-Neelsen technique. Acta Vet. Scand. 1981; 22:594.
Casemore DP, Armstrong M, Jackson B. Screening for Cryptosporidium in stools. Lanced 1984; 1:734-735.
Gonçalves EMN, Araújo RS, Orban M, Matté GR, Matté MH, Corbett CEP. Protocol for DNA extraction of Cryptosporidium spp. oocysts in fecal samples. Inst. Med. trop. S. Paulo. 2008; 50:165-167.
Xiao L, Alderisio K, Limor J, Royer M, Lal AA. Identification of species and sources of Cryptosporidium oocysts in storm waters with a small-subunit rRNA-based diagnostic and genotyping tool. Appl Environ Microbiol 2000; 66:5492-5498.
Morgan UM, Monis P, Xiao L, Limor J, Sulaiman I, Raidal S, et al. Molecular and phylogenetic characterization of Cryptosporidium from birds. International journal for Parasitology 2001; 31:289-296.
Spano F, Putignani L, Mclauchlin J, Casemore DP, Crisanti A. PCR-RFLP analysis of the Cryptosporidium oocyst wall protein (COWP) gene discriminates between C. wrairi and C. parvum, and between C. parvum isolates of human and animal origin. FEMS Microbiol Lett. 1997; 150:209-217.
Sanguinetti CJ, Dias N, Simpson A. Rapid silver staining and recovery of PCR products separate on polycrylamide gels. Biotechniques 1994; 17:914-921.
APHA-AWWA-WPCF. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater. 16 ed. Washington, USA; 1985.
Vesey G, Slade JS, Byrne M, Shepherd K, Fricker CR. A new method for the concentration of Cryptosporidium oocysts from water. J. Appl. Bacteriol. 1993; 75:82-86.
Alonso M, Corcuera M, Roldán M, Picazo A, Gómez F. Modificación de la técnica de Ziehl-Neelsen para la detección de micobacterias con la utilización de microondas. Técnicas en Patología 1996; 29:33-35.
Arrowoodt MJ, Sterling MM. Comparison of conventional staining methods and Monoclonal AntibodyBased methods for Cryptosporidium Oocyst Detection. J. Clin. Microbiol.1989; 27:1490-1495.
Le Blancq SM, Khramtsov NV, Zamani F, Upton SJ, WU TW. Ribosomal RNA gene organization in Cryptosporidium parvum. Mol Biochem Parasitol 1997; 90:463-478.
Piper M, Bankier AT, Dear PH. A happy map of Cryptosporidium parvum. Genome Res. 1998; 8:1299-307.
Weber R, Bryan RT, Bishop HS, Walquist SP, Sullovan J, Juranek D. Threshold of detection of Cryptosporidium oocysts in human stool specimens: evidence for low sensitivity of current methods. J. clin. Microbiol. 1991; 29:1323-1327.
Johnson DW, Pieniazek NJ, Griffin DW, Misener L, Rose JB. Development of a PCR protocol for sensitive detection of Cryptosporidium in water samples. Appl. Environ. Microbiol. 1995; 61:3849-3855.
Webster KA, Smith HV, Giles M, Dawson L, Robertson LJ. Detection of Cryptosporidium parvum oocysts in faeces: comparison of conventional coproscopical methods and the polymerase chain reaction. Veterinary Parasitology 1996; 61:5-13.
Arango M, Rodríguez D, Prada N. Frecuencia de Cryptosporidium spp. en materia fecal de niños entre un mes y trece años en un hospital local colombiano. Colomb. Med. 2006; 37(2):121-125.
Rivera O, Vásquez LR. Cryptosporidium spp.: informe de un caso clínico en Popayán, Cauca. Rev Col Gastroenterol 2006; 21(3):125-129.
Rodríguez E, Manrique-Abril F, Pulido M, Ospina-Díaz J. Frecuencia de Cryptosporidium spp. en caninos de la ciudad de Tunja, Colombia. Rev. MVZ Córdoba 2009; 14(2):1697-1704.
Fayer R, Morgan U, Upton SJ. Epidemiology of Cryptosporidium: Transmission, detection and identification. Int J Parasitol 2000; 30:1305-1322.
Keshavarz A, Athari A, Haghighi A, Kazami B, Abadi A. Genetic characterization of Cryptosporidium spp. Among children with diarrhea in Tehran and Qazvin provinces, Iran. Iranian J parasitol 2008; 3:30-36.
Trotz-Williams LA, Martin DS, Gatei W, Cama V, Peregrine AS, Martin SW, et al. Genotype and subtype analyses of Cryptosporidium isolates from dairy calves and humans in Ontario. Parasitology research 2006; 99:346-352.
Carey CM, Lee H, Trevors JT. Biology, persistence and detection of Cryptosporidium parvum and Cryptosporidium hominis oocyst. Water research 2004; 38:818-862.
Fayer R, Xiao L. Cryptosporidium y cryptosporidosis. 2 ed. Taylor & Francis group editorial; 2008.
type_driver info:eu-repo/semantics/article
type_coar http://purl.org/coar/resource_type/c_6501
type_version info:eu-repo/semantics/publishedVersion
type_coarversion http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85
type_content Text
publishDate 2022-03-17
date_accessioned 2022-03-17T00:36:58Z
date_available 2022-03-17T00:36:58Z
url https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/biosalud/article/view/4749
url_doi https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/biosalud/article/view/4749
issn 1657-9550
eissn 2462-960X
citationstartpage 19
citationendpage 29
url2_str_mv https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/biosalud/article/download/4749/4334
_version_ 1811199446671687680

Código QR

Estadísticas y Métricas Alternativas

Títulos similares