Titulo:
Evaluación microbiológica y molecular de Moniliophthora perniciosa (agaricales: marasmiaceae)
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Sumario:
Moniliophthora perniciosa presenta discrepancias en su taxonomía y es el agente causal de la escoba de bruja del cacao, que en Colombia es la segunda enfermedad después de la moniliasis (Moniliophthora roreri). En este estudio se analizaron 12 muestras del patógeno, obtenidas de diferentes materiales de cacao de la Granja Casa Luker S.A. (Palestina, Caldas, Colombia). El ADN fue obtenido de cultivos monospóricos y de fructificaciones del hongo. Cada muestra se evaluó a partir de cultivos microbiológicos utilizando marcadores moleculares tipo ITS (genes ITS1, ITS2 y 5.8S). La caracterización molecular del ADN obtenido de la extracción directa de fructificaciones del hongo, evita la selección artificial en los medios de cultivo y... Ver más
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0123-3068
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2010-01-01
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Boletín Científico del Centro de Museos - 2011
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Evaluación microbiológica y molecular de Moniliophthora perniciosa (agaricales: marasmiaceae) Microbiological and molecular evaluation of Moniliophthora perniciosa (agaricales: marasmiaceae) Moniliophthora perniciosa presenta discrepancias en su taxonomía y es el agente causal de la escoba de bruja del cacao, que en Colombia es la segunda enfermedad después de la moniliasis (Moniliophthora roreri). En este estudio se analizaron 12 muestras del patógeno, obtenidas de diferentes materiales de cacao de la Granja Casa Luker S.A. (Palestina, Caldas, Colombia). El ADN fue obtenido de cultivos monospóricos y de fructificaciones del hongo. Cada muestra se evaluó a partir de cultivos microbiológicos utilizando marcadores moleculares tipo ITS (genes ITS1, ITS2 y 5.8S). La caracterización molecular del ADN obtenido de la extracción directa de fructificaciones del hongo, evita la selección artificial en los medios de cultivo y garantiza un diagnóstico más real de la diversidad del patógeno en las plantaciones. La caracterización molecular permitió diferenciar entre M. perniciosa y M. roreri. Moniliophthora perniciosa presents discrepancies in its taxonomy and is the causal agent of cocoa witches' broom, which in Colombia is the second disease after moniliasis (Moniliophthora roreri). In this study 12 samples of the pathogen obtained from different cocoa materials from the Casa Luker S.A. Farm (Palestina, Caldas, Colombia) were analyzed. The DNA was obtained from monosporic cultures and from the fungus fructification. Each sample was evaluated from microbiological cultures using molecular markers ITS (ITS1, ITS2 and 5.8S genes). The Molecular ADN characterization obtained from direct extraction from the fungus fructification avoids artificial selection in the culture means and ensures a more realistic diagnosis of the pathogen diversity in the plantations. The molecular characterization allowed differentiation between M. pernicious and M. roreri. Orozco, Carlos Alberto Osorio S., Carolina Botero, María José Rivera Páez, Fredy A. López Gartner, Germán Ariel ITS ADN ribosomal escoba de bruja moniliasis del cacao ITS ribosomal DNA cocoa witches’ broom disease moniliasis of the cocoa 15 1 Núm. 1 , Año 2011 : Enero - Junio Artículo de revista Journal article 2011-01-01T00:00:00Z 2011-01-01T00:00:00Z 2010-01-01 application/pdf Boletín Científico Boletín Científico Centro de Museos Museo de Historia Natural 0123-3068 2462-8190 https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/boletincientifico/article/view/4421 https://revistasojs.ucaldas.edu.co/index.php/boletincientifico/article/view/4421 spa https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ Boletín Científico del Centro de Museos - 2011 41 47 AIME, M. & PHILLIPS-MORA, W. 2005. The causal agents of witches' broom and pod rot of cacao (chocolate, Theobroma cacao) form a new lineage of Marasmiaceae. Mycologia 97(5):1012-1022. ARANZAZU, F., 2000. Escoba de bruja en Colombia su impacto económico y manejo, Tecnología para el mejoramiento del sistema de producción del cacao. Revta. Corpoica, 85-90. ARRUDA, C.; FERREIRA, M. & FELIPE, M., 2003. Nuclear and Mitochondrial rDNA variability in Crinipellis perniciosa from different geographic places. Origins and hosts, 25-37. CHEN, W.; GRAU, R.; ADEE, E. & MENG, X., 2000. A molecular marker identifying subspecific populations of the soybean brown stem rot pathogen, Phialophora gregata. Ecology and Population Biology, 90: 875-883. CORREA, A., 1983. Prueba de medios de cultivos artificiales para la fructificación de Crinipellis perniciosa: Tesis, Universidad de Caldas, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Manizales. GARCÉS, D., 2001. Escoba de bruja del cacao. Revta. Agronomía, 24: 329-369. GOODWIN, D.C. & LEE, S.B., 1993. Microwave Miniprep of Total Genomic DNA from Fungi, Plants, Protists, and Animals for PCR. Biotechniques, 15: 438-444. LANA, T., 2004. 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Biodiversity and biogeography of the cacao (Theobroma cacao) pathogen Moniliophthora roreri in tropical America. Plant Pathology 56: 911-922. RESENDE, M.; GUTEMBERG, B.; SILVA, L.; NIELLA, G.; CARVALHO, G.; SANTIAGO, D. & BEZERRA, J., 2000. Crinipellis perniciosa proveniente de um novo hospedeiro, Heteropteys acutifolia, e'patogenicoao T. cacao. Fitopatologia Brasileira, 25: 88-91. RODRÍGUEZ, E. & SAAVEDRA, J., 2005. Ajuste de metodologías para la producción de basidiocarpos de escoba de bruja Crinipellis perniciosa (Stahel) Singer en medios artificiales. Ascolfi Informa, 31: 1-3. SANGUINETTI, C.J; DIAS, N. & SIMPSON, A.J., 1994. Rapid silver staning and recovery of PCR products separate on polycrylamide gels. Biotechniques, 17: 914-921. SARTORATO, A.; NECHET, K.L. & HALFELD-VIEIRA, B.A., 2006. Diversidad e genética de isolados de Rhizoctonia solani coletados em feijão-caupi no Estado de Roraima. Fitopatología Brasileira, 31: 24-33. SINGER, R., 1942. Monographic study of the genera Crinipellis and Chaetocalathus. Lilloa Tucuman, 8: 441-514. STAHEL, G., 1915. Bull. Dep. Landb. Suriname 33, 26pp. (description sp. nov) VILGALYS, R. & GONZÁLEZ, D., 1990. Organization of ribosomal DNA in the basidiomycete Thanatephorus praticola. Current Genetics, 18: 277-280. VILLEGAS, R.L., 2005. Aislamiento monospórico de Moniliophthora perniciosa. Instituto Colombiano Agropecuario. WHITE, T.; BRUNS, T.; LEE, S. & TAYLOR, J., 1990. Amplification and direct sequencing of fungal RNA genes for phylogenetics: 315-322 (in) M.A. INNIS, D.H. GELGARD, J.J. SNINSKY & T.J. WHITE (eds.) PCR Protocols: a Guide to Methods and Applications. 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