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Efecto del almidón y dos fitorreguladores sobre la germinación de Prosthechea sp.
.

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Este artículo aborda la investigación que se realizó para determinar el efecto del almidón y dos reguladores de crecimiento (6-bencilaminopurina, BAP, y ácido naftalenacético, ANA) sobre la germinación de Prosthechea sp., una orquídea cuya población está disminuyendo y en peligro de extinción en San Rafael, zona rural de Fusagasugá (Cundinamarca, Colombia), debido a la deforestación y a la explotación ilegal por parte de sus habitantes. Como alternativa para su propagación, algunas semillas se cultivaron in vitro sobre el medio Murashige y Skoog, suplementado con almidón (0, 10 g×L-1), BAP (0, 0.5, 1 y 2 mg×L-1) y ANA (0, 0.5, 1 y 2 mg×L-1), durante 12 semanas. Se utilizó un diseño al azar con un arreglo factorial de 2×4×4, con 32 tratamien... Ver más

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2018-12-03

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spelling Efecto del almidón y dos fitorreguladores sobre la germinación de Prosthechea sp.
Effect of Starch and Two Phytoregulators on the Germination Process of Prosthechea sp.
Este artículo aborda la investigación que se realizó para determinar el efecto del almidón y dos reguladores de crecimiento (6-bencilaminopurina, BAP, y ácido naftalenacético, ANA) sobre la germinación de Prosthechea sp., una orquídea cuya población está disminuyendo y en peligro de extinción en San Rafael, zona rural de Fusagasugá (Cundinamarca, Colombia), debido a la deforestación y a la explotación ilegal por parte de sus habitantes. Como alternativa para su propagación, algunas semillas se cultivaron in vitro sobre el medio Murashige y Skoog, suplementado con almidón (0, 10 g×L-1), BAP (0, 0.5, 1 y 2 mg×L-1) y ANA (0, 0.5, 1 y 2 mg×L-1), durante 12 semanas. Se utilizó un diseño al azar con un arreglo factorial de 2×4×4, con 32 tratamientos y 5 repeticiones. En los resultados se observó que los tratamientos suplementados con almidón obtuvieron los mayores valores de germinación, siendo el adicionado con BAP (2 mg×L-1) y ANA (0.5 mg×L-1) el mejor, con un 52.67%.
This paper presents the research that was carried out to determine the effect of starch and two growth regulators (6-benzylaminopurine, BAP, and naphthalene acetic acid, ANA) on the germination of Prosthechea sp., an orchid whose population is declining and at risk of extinction in San Rafael, rural area of Fusagasuga (Cundinamarca, Colombia), due to deforestation and illegal exploitation by its inhabitants. As an alternative for its propagation, some seeds were cultivated in vitro on the Murashige and Skoog medium, supplemented with starch (0, 10 g×L-1), BAP (0, 0.5, 1, and 2 mg×L-1), and ANA (0, 0.5, 1, and 2 mg×L-1), for 12 weeks. A random design was used with a 2×4×4 factorial arrangement, with 32 treatments and 5 repetitions. The results showed that the treatments supplemented with starch obtained the highest values of germination, being the one added with BAP (2 mg×L-1) and ANA (0.5 mg×L-1) the best, with 52.67%.
Ariza, César
Deaza, Edwin
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Orjuela, Cristian
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Artículo de revista
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46
Arditti, J. (1984). An history of orchid hybridization, seed germination and tissue culture. Botanical Journal of the Linnean Society, 89(4), 359-381.
Arditti, J. y Ernst, R. (1993). Micropropagation of orchids. New York, United States: John Wiley-Sons, Inc.
Arditti, J. y Ghani, A. K. (2000). Tansley Review No. 110. Numerical and physical properties of orchid seeds and their biological implications. The New Phytologist, 145(3), 367-421.
Ávila-Díaz, I. y Salgado, G. R. (2006). Propagación y mantenimiento in vitro de orquídeas mexicanas, para colaborar en su conservación. Biológicas, 8, 138-149.
Barba, A., Luna, B. y Romero, J. (2001). Micropropagación de plantas. México, D. F., México: Trillas.
Bazand, A., Otroshy, M., Fazilati, M., Piri, H. y Mokhtari, A. (2014). Effect of plant growth regulators on seed germination and development of protocorm and seedling of Phalaenopsis amabilis (L.) Blume (Orchidaceae). Annual Research & Review in Biology, 4(24), 3962-3969.
Bhojwani, S. y Razdan, M. (1996). Plant tissue culture: Theory and practice, a revised edition. Amsterdam, Netherlands: Elsevier.
Billard, C. E., Dalzotto, C. A. y Lallana, V. H. (2014). Desinfección y siembra asimbiótica de semillas de dos especies y una variedad de orquídeas del género Oncidium. Polibotánica, 38, 69-81.
Calderón-Sáenz, E. (Ed.). (2007). Libro rojo plantas de Colombia. Volumen 6: Orquídeas, primera parte. Serie libros rojos de especies amenazadas de Colombia. Bogotá, Colombia: Instituto Alexander von Humboldt-Ministerio de Medio Ambiente, Vivienda y Desarrollo Territorial.
Clements, M. A. (1987). The symbiotic method of orchid seed germination. Progress on Australasian epiphytes. Proceedings of the World Orchid Hiroshima Symposium. Japan, Hiroshima.
Clements, M. A. (1988). Orchid mycorrhizal associations. Lindleyana, 3, 73-86.
De la Nova, B. M., Oria, A., Casadesus, L. y Gómez, M. (1998). Aislamiento, caracterización e inoculación con endomicorrizas orquideales en especies de orquídeas. La Habana, Cuba: Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas, Universidad de La Habana.
Derkx, M. P. M. y Karssen, C. M. (1993). Changing sensitivity to light and nitrate but not to gibberellins regulates seasonal dormancy patterns in Sisymbrium officinale seeds. Plant, Cell & Environment, 16(5), 469-479.
Gil, A., Contreras, D. y Gutiérrez, L. (2016). Establecimiento in vitro de protocormos de Prosthechea sp. bajo diferentes concentraciones de ácido naftalenacético. Revista Mutis, 6(1), 6-15. doi: 10.21789/22561498.1108
Hilhorst, H. W. M. y Karssen, C. M. (1989). The role of light and nitrate in seed germination. In R. B. Taylorson (Ed.), Recent advances in the development and germination of seeds (pp. 191-205). New York, United States: Plenum Press.
Hossain, M. M., Sharma, M., Teixeira da Silva, J. A. y Pathak, P. (2010). Seed germination and tissue culture of Cymbidium giganteum Wall. ex Lindl. Scientia Horticulturae, 123(4), 479-487. doi: 10.1016/j.scienta.2009.10.009
Hurtado, M. D. V. y Merino, M. M. E. (1987). Cultivo de tejidos vegetales. México, D. F., México: Editorial Trillas, S. A. de C. V.
Ikuma, H. y Thimann, K. (1963). Activity of gibberellin ‘D’ on the germination of photosensitive lettuce seeds. Nature, 197, 1313-1314.
Jarvis, A. (2009). La conservación de orquídeas. Congreso sobre biodiversidad y cambio climático. Contraloría Nacional de Colombia, Colombia.
Kalimuthu, K., Senthilkumar, R. y Vijayakumar, S. (2007). In vitro micropropagation of orchid, Oncidium sp. (Dancing Dolls). African Journal of Biotechnology, 6(10), 1171-1174.
Kitsaki, C. K., Zygouraki, S., Ziobora, M. y Kintzios, S. (2004). In vitro germination, protocorm formation and plantlet development of mature versus immature seeds from several Ophrys species (Orchidaceae). Plant Cell Reports, 23(5), 284-290.
Knudson C. (1922). Nonsymbiotic germination of orchid seeds. Botanical Gazette 73:1-25.
Lee Taylor, D. y Bruns, T. D. (1997). Independent, specialized invasions of ectomycorrhizal mutualism by two nonphotosynthetic orchids. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 94(9), 4510-4515.
Martin, K. P. (2003). Clonal propagation, encapsulation and reintroduction of Ipsea malabarica (Reichb. f.) J. D. sinensis var. amoena in vitro. Mycological Research, 97(6), 746-752.
McKendrick, S. L., Leake, J. R., Lee Taylor, D. y Read, D. J. (2002). Symbiotic germination and development of the myco-heterotrophic orchid Neottia nidus-avis in nature and its requirement for locally distributed Sebacina spp. New Phytologist, 154(1), 233-247.
Mitchell, R. (1989). Growing hardy orchids from seeds at Kew. Plantsman, 11, 152-169.
Murashige, T. y Skoog, F. (1962). A revised medium of rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15(3), 473-497.
Otero, J. T. y Bayman, P. (2009). Symbiotic vs. asymbiotic seed germination in epiphytic orchids. Acta Agronómica, 58(4), 270-276.
Pant, B. y Thapa, D. (2012). In vitro mass propagation of an epiphytic orchid, Dendrobium primulinum Lindl. through shoot tip culture. African Journal of Biotechnology, 11(42), 9970-9974. doi: 10.5897/AJB11.3106
Parmar, G. y Pant, B. (2015). In vitro seed germination and seedling development of Coelogyne flaccida Lindl. (Orchidaceae). Advances in Forestry Science, 2(4), 85-88.
Parmar, G. y Pant, B. (2016). In vitro seed germination and seedling development of the orchid Coelogyne stricta (D. Don) Schltr. African Journal of Biotechnology, 15(5), 105-109. doi: 10.5897/AJB2015.14870
Paudel, M., Pradhan, S. y Pant, B. (2012). In vitro seed germination and seedling development of Esmeralda clarkei Rchb. f. (Orchidaceae). Plant Tissue Culture and Biotechnology, 22(2), 107-111.
Pedroza-Manrique, J., Fernandez-Lizarazo, C. y Suarez-Silva, A. (2005). Evaluation of the effect of three growth regulators in the germination of Comparettia falcata seeds under in vitro conditions. In Vitro Cellular & Developmental Biology. Plant, 41(6), 838-843.
Pérez, O., Sánchez, E. y Ortiz, P. (2009). Inventario orquideológico de la Reserva Bosque de Yotoco, Valle del Cauca. Acta Agronómica, 58(3), 189-196.
Perry, L. M. y Metzger, J. (1980). Medicinal plants of east and southeast Asia: attributed properties and uses. Cambridge, Estados Unidos: MIT Press.
Pierik, R. L. (1990). Cultivo in vitro de las plantas superiores. Madrid, España: Mundi-Prensa.
Rao, A. N. (1997). Tissue culture in Orchid Industry. In J. Reinert and Y. P. S. Bajaj (Eds.), Applied and Fundamental aspects of Plant Cell, Tissue and Organ Culture. New Delhi, India: Narosa Publishing House.
Rasmussen, H. N. (1995). Terrestrial orchids. From seeds to mycotrophic plants. Cambridge, United Kingdom: Cambridge University Press.
Roca, W. M., Nolt, B., Mafla, G., Roa, J. C. y Reyes, R. (1991). Eliminación de virus y propagación de clones en la yuca (Manihot esculenta Crantz). En W. M. Roca y L. A. Mroginski (Eds.), Cultivo de tejidos en la agricultura: fundamentos y aplicaciones (pp. 403-421). CIAT.
Rodrigues, J., Gomes, A., Pasqual, M., Almendagna, F. y De Assis, F. (2009). Concentrações de sais do meio Knudson C e de ácido giberélico no crescimento in vitro de plântulas de orquídea. Ciência Rural, 39(3), 772-777.
Roy, A. R., Patel, R. S., Patel, V. V., Sajeev, S. y Deka, B. (2011). Asymbiotic seed germination, mass propagation and seedling development of Vanda coerulea Griff ex. Lindl. (Blue Vanda): an in vitro protocol for an endangered orchid. Scientia Horticulturae, 128(3), 325-331.
Seeja, G., Sreekumar, S., Biju, C. K. y Arya, K. (2018). Inbreeding and in vitro seed germination in Spathoglottis albida Kraenzl. Journal of Agriculture and Veterinary Science, 11(1), 14-20. doi: 10.9790/2380-1101031420
Shimasaki, K. y Uemoto, S. (1991). Rhizome induction and plantlet regeneration of Cymbidium goeringii from flower bud cultures in vitro. Plant cell, Tissue and Organ Culture, 25(1), 49-52.
Soto-Arenas, M., Solano Gómez, R. y Hágsater, E. (2007). Risk of extinction and patterns of diversity loss in Mexican orchids. Lankesteriana, 7(1-2), 114-121.
Steele, W. K. (2007). Propagation protocol for ram’s head lady’s slipper (Cypripedium arietinum). Native Plants Journal, 8(1), 58-64.
Taiz, L. y Zeiger, E. (1998). Plant physiology. Sunderland, England: Sinanuer Associates, Inc.
Yam, T. W. y Arditti, J. (2009). History of orchid propagation: a mirror of the history of biotechnology. Plant Biotechnology Reports, 3(1). doi: 10.1007/s11816-008-0066-3
Yang, J., Lee, H. J., Shin, D. H., Oh, S. K., Seon, J. H., Paek, K. Y. y Han, K. H. (1999). Genetic transformation of Cymbidium orchid by particle bombardment. Plant Cell Reports, 18(12), 978-984.
Yong, J. W., Ge, L., Ng, Y. F. y Tan, S. N. (2009). The chemical composition and biological properties of coconut (Cocos nucifera L.) water. Molecules, 14(12), 5144-5164.
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description Este artículo aborda la investigación que se realizó para determinar el efecto del almidón y dos reguladores de crecimiento (6-bencilaminopurina, BAP, y ácido naftalenacético, ANA) sobre la germinación de Prosthechea sp., una orquídea cuya población está disminuyendo y en peligro de extinción en San Rafael, zona rural de Fusagasugá (Cundinamarca, Colombia), debido a la deforestación y a la explotación ilegal por parte de sus habitantes. Como alternativa para su propagación, algunas semillas se cultivaron in vitro sobre el medio Murashige y Skoog, suplementado con almidón (0, 10 g×L-1), BAP (0, 0.5, 1 y 2 mg×L-1) y ANA (0, 0.5, 1 y 2 mg×L-1), durante 12 semanas. Se utilizó un diseño al azar con un arreglo factorial de 2×4×4, con 32 tratamientos y 5 repeticiones. En los resultados se observó que los tratamientos suplementados con almidón obtuvieron los mayores valores de germinación, siendo el adicionado con BAP (2 mg×L-1) y ANA (0.5 mg×L-1) el mejor, con un 52.67%.
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references Arditti, J. (1984). An history of orchid hybridization, seed germination and tissue culture. Botanical Journal of the Linnean Society, 89(4), 359-381.
Arditti, J. y Ernst, R. (1993). Micropropagation of orchids. New York, United States: John Wiley-Sons, Inc.
Arditti, J. y Ghani, A. K. (2000). Tansley Review No. 110. Numerical and physical properties of orchid seeds and their biological implications. The New Phytologist, 145(3), 367-421.
Ávila-Díaz, I. y Salgado, G. R. (2006). Propagación y mantenimiento in vitro de orquídeas mexicanas, para colaborar en su conservación. Biológicas, 8, 138-149.
Barba, A., Luna, B. y Romero, J. (2001). Micropropagación de plantas. México, D. F., México: Trillas.
Bazand, A., Otroshy, M., Fazilati, M., Piri, H. y Mokhtari, A. (2014). Effect of plant growth regulators on seed germination and development of protocorm and seedling of Phalaenopsis amabilis (L.) Blume (Orchidaceae). Annual Research & Review in Biology, 4(24), 3962-3969.
Bhojwani, S. y Razdan, M. (1996). Plant tissue culture: Theory and practice, a revised edition. Amsterdam, Netherlands: Elsevier.
Billard, C. E., Dalzotto, C. A. y Lallana, V. H. (2014). Desinfección y siembra asimbiótica de semillas de dos especies y una variedad de orquídeas del género Oncidium. Polibotánica, 38, 69-81.
Calderón-Sáenz, E. (Ed.). (2007). Libro rojo plantas de Colombia. Volumen 6: Orquídeas, primera parte. Serie libros rojos de especies amenazadas de Colombia. Bogotá, Colombia: Instituto Alexander von Humboldt-Ministerio de Medio Ambiente, Vivienda y Desarrollo Territorial.
Clements, M. A. (1987). The symbiotic method of orchid seed germination. Progress on Australasian epiphytes. Proceedings of the World Orchid Hiroshima Symposium. Japan, Hiroshima.
Clements, M. A. (1988). Orchid mycorrhizal associations. Lindleyana, 3, 73-86.
De la Nova, B. M., Oria, A., Casadesus, L. y Gómez, M. (1998). Aislamiento, caracterización e inoculación con endomicorrizas orquideales en especies de orquídeas. La Habana, Cuba: Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas, Universidad de La Habana.
Derkx, M. P. M. y Karssen, C. M. (1993). Changing sensitivity to light and nitrate but not to gibberellins regulates seasonal dormancy patterns in Sisymbrium officinale seeds. Plant, Cell & Environment, 16(5), 469-479.
Gil, A., Contreras, D. y Gutiérrez, L. (2016). Establecimiento in vitro de protocormos de Prosthechea sp. bajo diferentes concentraciones de ácido naftalenacético. Revista Mutis, 6(1), 6-15. doi: 10.21789/22561498.1108
Hilhorst, H. W. M. y Karssen, C. M. (1989). The role of light and nitrate in seed germination. In R. B. Taylorson (Ed.), Recent advances in the development and germination of seeds (pp. 191-205). New York, United States: Plenum Press.
Hossain, M. M., Sharma, M., Teixeira da Silva, J. A. y Pathak, P. (2010). Seed germination and tissue culture of Cymbidium giganteum Wall. ex Lindl. Scientia Horticulturae, 123(4), 479-487. doi: 10.1016/j.scienta.2009.10.009
Hurtado, M. D. V. y Merino, M. M. E. (1987). Cultivo de tejidos vegetales. México, D. F., México: Editorial Trillas, S. A. de C. V.
Ikuma, H. y Thimann, K. (1963). Activity of gibberellin ‘D’ on the germination of photosensitive lettuce seeds. Nature, 197, 1313-1314.
Jarvis, A. (2009). La conservación de orquídeas. Congreso sobre biodiversidad y cambio climático. Contraloría Nacional de Colombia, Colombia.
Kalimuthu, K., Senthilkumar, R. y Vijayakumar, S. (2007). In vitro micropropagation of orchid, Oncidium sp. (Dancing Dolls). African Journal of Biotechnology, 6(10), 1171-1174.
Kitsaki, C. K., Zygouraki, S., Ziobora, M. y Kintzios, S. (2004). In vitro germination, protocorm formation and plantlet development of mature versus immature seeds from several Ophrys species (Orchidaceae). Plant Cell Reports, 23(5), 284-290.
Knudson C. (1922). Nonsymbiotic germination of orchid seeds. Botanical Gazette 73:1-25.
Lee Taylor, D. y Bruns, T. D. (1997). Independent, specialized invasions of ectomycorrhizal mutualism by two nonphotosynthetic orchids. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 94(9), 4510-4515.
Martin, K. P. (2003). Clonal propagation, encapsulation and reintroduction of Ipsea malabarica (Reichb. f.) J. D. sinensis var. amoena in vitro. Mycological Research, 97(6), 746-752.
McKendrick, S. L., Leake, J. R., Lee Taylor, D. y Read, D. J. (2002). Symbiotic germination and development of the myco-heterotrophic orchid Neottia nidus-avis in nature and its requirement for locally distributed Sebacina spp. New Phytologist, 154(1), 233-247.
Mitchell, R. (1989). Growing hardy orchids from seeds at Kew. Plantsman, 11, 152-169.
Murashige, T. y Skoog, F. (1962). A revised medium of rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15(3), 473-497.
Otero, J. T. y Bayman, P. (2009). Symbiotic vs. asymbiotic seed germination in epiphytic orchids. Acta Agronómica, 58(4), 270-276.
Pant, B. y Thapa, D. (2012). In vitro mass propagation of an epiphytic orchid, Dendrobium primulinum Lindl. through shoot tip culture. African Journal of Biotechnology, 11(42), 9970-9974. doi: 10.5897/AJB11.3106
Parmar, G. y Pant, B. (2015). In vitro seed germination and seedling development of Coelogyne flaccida Lindl. (Orchidaceae). Advances in Forestry Science, 2(4), 85-88.
Parmar, G. y Pant, B. (2016). In vitro seed germination and seedling development of the orchid Coelogyne stricta (D. Don) Schltr. African Journal of Biotechnology, 15(5), 105-109. doi: 10.5897/AJB2015.14870
Paudel, M., Pradhan, S. y Pant, B. (2012). In vitro seed germination and seedling development of Esmeralda clarkei Rchb. f. (Orchidaceae). Plant Tissue Culture and Biotechnology, 22(2), 107-111.
Pedroza-Manrique, J., Fernandez-Lizarazo, C. y Suarez-Silva, A. (2005). Evaluation of the effect of three growth regulators in the germination of Comparettia falcata seeds under in vitro conditions. In Vitro Cellular & Developmental Biology. Plant, 41(6), 838-843.
Pérez, O., Sánchez, E. y Ortiz, P. (2009). Inventario orquideológico de la Reserva Bosque de Yotoco, Valle del Cauca. Acta Agronómica, 58(3), 189-196.
Perry, L. M. y Metzger, J. (1980). Medicinal plants of east and southeast Asia: attributed properties and uses. Cambridge, Estados Unidos: MIT Press.
Pierik, R. L. (1990). Cultivo in vitro de las plantas superiores. Madrid, España: Mundi-Prensa.
Rao, A. N. (1997). Tissue culture in Orchid Industry. In J. Reinert and Y. P. S. Bajaj (Eds.), Applied and Fundamental aspects of Plant Cell, Tissue and Organ Culture. New Delhi, India: Narosa Publishing House.
Rasmussen, H. N. (1995). Terrestrial orchids. From seeds to mycotrophic plants. Cambridge, United Kingdom: Cambridge University Press.
Roca, W. M., Nolt, B., Mafla, G., Roa, J. C. y Reyes, R. (1991). Eliminación de virus y propagación de clones en la yuca (Manihot esculenta Crantz). En W. M. Roca y L. A. Mroginski (Eds.), Cultivo de tejidos en la agricultura: fundamentos y aplicaciones (pp. 403-421). CIAT.
Rodrigues, J., Gomes, A., Pasqual, M., Almendagna, F. y De Assis, F. (2009). Concentrações de sais do meio Knudson C e de ácido giberélico no crescimento in vitro de plântulas de orquídea. Ciência Rural, 39(3), 772-777.
Roy, A. R., Patel, R. S., Patel, V. V., Sajeev, S. y Deka, B. (2011). Asymbiotic seed germination, mass propagation and seedling development of Vanda coerulea Griff ex. Lindl. (Blue Vanda): an in vitro protocol for an endangered orchid. Scientia Horticulturae, 128(3), 325-331.
Seeja, G., Sreekumar, S., Biju, C. K. y Arya, K. (2018). Inbreeding and in vitro seed germination in Spathoglottis albida Kraenzl. Journal of Agriculture and Veterinary Science, 11(1), 14-20. doi: 10.9790/2380-1101031420
Shimasaki, K. y Uemoto, S. (1991). Rhizome induction and plantlet regeneration of Cymbidium goeringii from flower bud cultures in vitro. Plant cell, Tissue and Organ Culture, 25(1), 49-52.
Soto-Arenas, M., Solano Gómez, R. y Hágsater, E. (2007). Risk of extinction and patterns of diversity loss in Mexican orchids. Lankesteriana, 7(1-2), 114-121.
Steele, W. K. (2007). Propagation protocol for ram’s head lady’s slipper (Cypripedium arietinum). Native Plants Journal, 8(1), 58-64.
Taiz, L. y Zeiger, E. (1998). Plant physiology. Sunderland, England: Sinanuer Associates, Inc.
Yam, T. W. y Arditti, J. (2009). History of orchid propagation: a mirror of the history of biotechnology. Plant Biotechnology Reports, 3(1). doi: 10.1007/s11816-008-0066-3
Yang, J., Lee, H. J., Shin, D. H., Oh, S. K., Seon, J. H., Paek, K. Y. y Han, K. H. (1999). Genetic transformation of Cymbidium orchid by particle bombardment. Plant Cell Reports, 18(12), 978-984.
Yong, J. W., Ge, L., Ng, Y. F. y Tan, S. N. (2009). The chemical composition and biological properties of coconut (Cocos nucifera L.) water. Molecules, 14(12), 5144-5164.
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