Titulo:
Efecto de la criopreservación espermática en la fragmentación del ADN, viabilidad, y parámetros cinéticos en toros Brown Swiss
.
Sumario:
Se evaluó mediante el sistema computarizado de análisis seminal (C.A.S.A), el efecto de la criopreservación espermática sobre la fragmentación del ADN, la viabilidad, y la cinética espermática. Se colectaron 76 eyaculados de 5 toros de la raza Brown Swiss del Banco Nacional de Semen de la UNALM. Para el análisis de la fragmentación del ADN se utilizó el Kit Sperm-Halomax® y para el análisis de la viabilidad espermática la tinción Hoeschst 333242/PI. Se evaluó si existió un cambio significativo entre los valores antes y después de la criopreservación para cada uno de los parámetros seminales evaluados utilizando la prueba T de muestras relacionadas, previa verificación de normalidad con la prueba de Shapiro-Wilk; en caso de presencia de no n... Ver más
Guardado en:
2027-4297
13
2020-11-11
e787
e787
Revista Colombiana de Ciencia Animal - RECIA - 2021
info:eu-repo/semantics/openAccess
http://purl.org/coar/access_right/c_abf2
| id |
metarevistapublica_unisucre_revistacolombianadecienciaanimal_recia_86_article_787 |
|---|---|
| record_format |
ojs |
| spelling |
Efecto de la criopreservación espermática en la fragmentación del ADN, viabilidad, y parámetros cinéticos en toros Brown Swiss Effect of sperm cryopreservation on DNA fragmentation, viability, and kinetics parameters in Brown Swiss bulls Se evaluó mediante el sistema computarizado de análisis seminal (C.A.S.A), el efecto de la criopreservación espermática sobre la fragmentación del ADN, la viabilidad, y la cinética espermática. Se colectaron 76 eyaculados de 5 toros de la raza Brown Swiss del Banco Nacional de Semen de la UNALM. Para el análisis de la fragmentación del ADN se utilizó el Kit Sperm-Halomax® y para el análisis de la viabilidad espermática la tinción Hoeschst 333242/PI. Se evaluó si existió un cambio significativo entre los valores antes y después de la criopreservación para cada uno de los parámetros seminales evaluados utilizando la prueba T de muestras relacionadas, previa verificación de normalidad con la prueba de Shapiro-Wilk; en caso de presencia de no normalidad, se utilizó la prueba de rangos con signo de Wilcoxon. Se aplicó ajuste de Bonferroni para las comparaciones antes mencionadas. Todos los análisis se realizaron considerando 5 réplicas biológicas en el paquete estadístico SPSS v.23 con un 95% de confiabilidad. Se encontraron diferencias significativas en 16 de los 21 parámetros evaluados, se evidenció un aumento de la fragmentación del ADN del 3%, en el parámetro de viabilidad espermática se manifestó una disminución de los valores analizados y se observó la disminución de los valores de los siguientes parámetros motilidad, motilidad progresiva, motilidad rápida, al igual que los parámetros cinéticos VCL, VSL, VAP, DSL, DAP, ALH, BCF, HAC, STR. Sin embargo, se observó un incremento en los valores de motilidad local y espermatozoides inmóviles, atribuidos al efecto de la criopreservación seminal. The effect of sperm cryopreservation on DNA fragmentation, viability, and sperm kinetics was evaluated using a Computer Assisted Semen Analysis (C.A.S.A). 76 ejaculates were collected from 5 bulls of the Brown Swiss breed from the National Semen Bank of UNALM. For the analysis of DNA fragmentation, the Sperm-Halomax® Kit was used and for the analysis of the sperm viability Hoeschst 333242 / PI stain. Significant change before and after the cryopreservation for each one of the seminal parameters was evaluated using the T test of related samples, previous verification of normality with the Shapiro-Wilk test. In case data were not normal, the Wilcoxon signed rank test was used. The Bonferroni adjustment was applied for the referred above comparisons. All the analyses were made considering 5 biological replicas in the statistical package SPSS v.23 with 95% reliability. Significant differences were found in 16 of the 21 parameters evaluated, an increase in DNA fragmentation of 3% was evidenced, and decrease in the sperm viability parameter was manifested. Lower values of the following parameters motility, progressive motility, rapid motility was observed, as well as the kinetic parameters VCL, VSL, VAP, DSL, DAP, ALH, BCF, HAC, STR. However higher values of local motility and immobile sperm were observed, attributed to the effect of seminal cryopreservation. Arbaiza-Barnechea, Martin Daniel Cabrera-Villanueva, Prospero Celestino Cryopreservation DNA fragmentation viability motility sperm kinetics Criopreservación fragmentación del ADN viabilidad motilidad cinética espermática 13 1 Núm. 1 , Año 2021 : RECIA 13(1):ENERO-JUNIO 2021 Artículo de revista Journal article 2020-11-11T00:00:00Z 2020-11-11T00:00:00Z 2020-11-11 application/pdf Universidad de Sucre Revista Colombiana de Ciencia Animal - RECIA 2027-4297 https://revistas.unisucre.edu.co/index.php/recia/article/view/e787 10.24188/recia.v13.n1.2021.787 https://doi.org/10.24188/recia.v13.n1.2021.787 spa https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ Revista Colombiana de Ciencia Animal - RECIA - 2021 e787 e787 Fatehi AN, Bevers MM, Schoevers E, Roelen BA, Colenbrander B, Gadella BM. DNA damage in bovine sperm does not block fertilization and early embryonic development but induces apoptosis after the first cleavages. J Androl. 2006; 27(2):176-188. https://doi.org/10.2164/jandrol.04152 Gadea J, Sellés E, Marco MA. The predictive value of porcine seminal parameters on fertility outcome under commercial conditions. Reprod Domest Anim. 2004; 39(5):303-308. https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2004.00513.x Davis RO, Drobnis EZ, Overstreet JW. Application of multivariate cluster, discriminate function, and stepwise regression analyses to variable selection and predictive modeling of sperm cryosurvival. Fertil Steril. 1995; 63(5):1051-1057. https://doi.org/10.1016/S0015-0282(16)57547-5 Tuli R, Schmidt-Baulain R, Holtz W. Computer-assisted motility assessment of spermatozoa from fresh and frozen—thawed semen of the bull, boar and goat Theriogenology. 1992; 38(3):487-490. https://doi.org/10.1016/0093-691X(92)90068-3 Karabinus DS, Evenson DP, Jost L, Baer R, Kaproth M. Comparison of semen quality in young and mature Holstein bulls measured by light microscopy and flow cytometry. J. Dairy Sci. 1990; 73(9):2364-2371. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(90)78919-9 Enciso M. La fragmentación del AND en espermatozoides de mamíferos. (Tesis doctoral) Universidad Autónoma de Madrid: España; 2009 http://hdl.handle.net/10486/4150 Ntemka A, Tsousis G, Brozos C, Boscos CM, Tsakmakidis IA. Breed differences of bull frozen‐thawed semen. Reprod Domest Anim. 2016; 51: 945-952. https://doi.org/10.1111/rda.12769 Amann RP, Katz DF. Andrology Lab Corner: Reflections on C.A.S.A after 25 years. J Androl. 2004; 25:317-325. https://doi.org/10.1002/j.1939-4640.2004.tb02793.x Khalil WA, El-Harairy MA, Zeidan AEB, Hassan MAE, Mohey-Elsaeed O. Evaluation of bull spermatozoa during and after cryopreservation: Structural and ultrastructural insights. International Journal of Veterinary Science and Medicine. 2018; 6:S49-S56. https://doi.org/10.1016/j.ijvsm.2017.11.001 Addad R, Freneau G, Resende L, Silva L. Evaluación clínica andrológica de toros nelore y tests de viavilidad espermática, integridad de acrosoma y fragmentación de cromatina a lo largo de tres estaciones de monta. Ciência Animal Brasileira. 2009; 10:1044-1054. https://www.revistas.ufg.br/vet/article/view/3395 Posado R, Hernández M, García JJ, Bartolomé DJ, López C, Gosálvez J. Evolución de la fragmentación del ADN en semen criopreservado de toros de Lidia. Arch Cootec. 2011; 60(231):441-444. http://doi.org/10.4321/S0004-05922011000300031 Duran EH, Morshedi M, Taylor S, Oehninger S. Sperm DNA quality predicts intrauterine insemination outcome: a prospective cohort study. Human Reproduction. 2002; 17(12):3122-3128. https://doi.org/10.1093/humrep/17.12.3122 Evenson DP, Darzynkiewicz Z, Melamed MR. Relation of mammalian sperm chromatin heterogeneity to fertility. Science. 1980; 210(4474):1131-1133. https://doi.org/10.1126/science.7444440 Larson KL, DeJonge CJ, Barnes AM, Jost LK, Evenson DP. Sperm chromatin structure assay parameters as predictors of failed pregnancy following assisted reproductive techniques. Hum Reprod. 2000; 15(8):1717-1722. https://doi.org/10.1093/humrep/15.8.1717 Johnson LA, Weitze KF, Fiser P, Maxwell WM. Storage of boar semen. Anim Reprod Sci. 2000; 62(1-3):143-172. https://doi.org/10.1016/S0378-4320(00)00157-3 Viñán DH, Alvarado ME. Adición de metil- β-ciclodextrina cargada de colesterol sobre la criopreservación de semen de toros Holstein Friesian. Revista De Investigaciones Veterinarias Del Perú. 2020; 30(4):1611-1618. https://doi.org/10.15381/rivep.v30i4.17159 Januskauska A, Johannisson A, Rodriguez-Martinez H. Assessment of sperm quality through fluorometry and sperm chromatin structure assay in relation to field fertility of frozen-thawed semen from Swedish AI bulls. Theriogenology. 2001; 55(4):947-961. https://doi.org/10.1016/S0093-691X(01)00456-3 Veloz DM. Evaluación de la calidad espermática de reproductores bovinos mediante el uso de sistemas de evaluación seminal convencional y sistema C.A.S.A (análisis seminal asistido por computadora) y su respuesta con la fertilidad por inseminación artificial. Tesis (Maestría). Universidad de Cuenca: Ecuador; 2017. http://dspace.ucuenca.edu.ec/handle/123456789/28466 Sundararaman M, Kalatharan J, Thilak J. Computer assisted semen analysis for quantification of motion characteristics of bull sperm during cryopreservation cycle. Vet World. 2012; 5(12):723-726. https://doi.org/10.5455/vetworld.2012.723-726 Morte MI, Rodrigues AM, Soares D, Rodrigues AS, Gamboa S, Ramalho-Santos J. The quantification of lipid and protein oxidation in stallion spermatozoa and seminal plasma: seasonal distinctions and correlations with DNA strand breaks, classical seminal parameters and stallion fertility. Anim Reprod Sci. 2008; 106(1-2):36-47. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2007.03.020 Muiño OR. Evaluación de la motilidad y viabilidad del semen bovino mediante el uso de sistemas C.A.S.A y citometría de flujo, identificación de subpoblaciones espermáticas. Tesis (Grado). Universidad de Santiago de Compostela: España; 2008. http://hdl.handle.net/10347/2406 Hirano Y, Shibahara H, Obara H, Suzuki T, Takamizawa S, Yamaguchi C, Tsunoda H, Sato I. Relationships between sperm motility characteristics assessed by the computer-aided sperm analysis (C.A.S.A) and fertilization rates in vitro. J Assist Reprod Genet. 2001; 18(4):213-218. https://doi.org/10.1023/A:1009420432234 Ormachea VE, Calsin CB, Zegarra OE. Cinética y morfometría espermática en semen congelado sexado y convencional de toros Brown Swiss. Revista De Investigaciones Veterinarias Del Perú. 2019; 30(1):500-506. https://doi.org/10.15381/rivep.v30i1.14696 Ancco G. Efecto de la motilidad espermática en la producción de embriones in vitro en bovinos. Tesis (Grado). Universidad Nacional Agraria la Molina: Ecuador; 2017. http://repositorio.lamolina.edu.pe/handle/UNALM/2898 Mora C, Mendez N. Evaluación espermática de ganado bovino mediante un sistema de análisis computacional (C.A.S.A.). Tlamati Sabiduría. 2016; 7:1-10. http://tlamati.uagro.mx/t7e2/241.pdf Quintín FJ, Hernández M, Sevilla M, Banzo P, Alabart JL, Serraller JM. Valoración reproductiva de toros jóvenes de testaje de raza Parda de montaña. AIDA. 2013. http://hdl.handle.net/10532/2275 Shanis BS, Check IJ, Bolendorf A, Interpretation and misinterpretation of semen parameters. Archives of Andrology Journal of Reproductive Systems. 2009; 23(3):213-227. https://doi.org/10.3109/01485018908986844 Bravo JA, Montanero J, Calero R, Roy TJ. Relación entre variables subjetivas e informatizadas del movimiento espermático del morueco. Archivos de Zootecnia. 2011; 60(232):1087-1094. http://doi.org/10.4321/S0004-05922011000400024 Holt WV. Basic aspects of frozen storage of semen. Anim Reprod Sci. 2000; 62(1-3):3-22. https://doi.org/10.1016/S0378-4320(00)00152-4 Watson PF. Recent developments and concepts in the cryopreservation of spermatozoa and the assessment of their post-thawing function. Reprod Fertil Dev. 1995; 7(4):871-891. https://doi.org/10.1071/rd9950871 https://revistas.unisucre.edu.co/index.php/recia/article/download/e787/952 info:eu-repo/semantics/article http://purl.org/coar/resource_type/c_6501 http://purl.org/redcol/resource_type/ARTREF info:eu-repo/semantics/publishedVersion http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85 info:eu-repo/semantics/openAccess http://purl.org/coar/access_right/c_abf2 Text Publication |
| institution |
UNIVERSIDAD DE SUCRE |
| thumbnail |
https://nuevo.metarevistas.org/UNIVERSIDADDESUCRE/logo.png |
| country_str |
Colombia |
| collection |
Revista Colombiana de Ciencia Animal - RECIA |
| title |
Efecto de la criopreservación espermática en la fragmentación del ADN, viabilidad, y parámetros cinéticos en toros Brown Swiss |
| spellingShingle |
Efecto de la criopreservación espermática en la fragmentación del ADN, viabilidad, y parámetros cinéticos en toros Brown Swiss Arbaiza-Barnechea, Martin Daniel Cabrera-Villanueva, Prospero Celestino Cryopreservation DNA fragmentation viability motility sperm kinetics Criopreservación fragmentación del ADN viabilidad motilidad cinética espermática |
| title_short |
Efecto de la criopreservación espermática en la fragmentación del ADN, viabilidad, y parámetros cinéticos en toros Brown Swiss |
| title_full |
Efecto de la criopreservación espermática en la fragmentación del ADN, viabilidad, y parámetros cinéticos en toros Brown Swiss |
| title_fullStr |
Efecto de la criopreservación espermática en la fragmentación del ADN, viabilidad, y parámetros cinéticos en toros Brown Swiss |
| title_full_unstemmed |
Efecto de la criopreservación espermática en la fragmentación del ADN, viabilidad, y parámetros cinéticos en toros Brown Swiss |
| title_sort |
efecto de la criopreservación espermática en la fragmentación del adn, viabilidad, y parámetros cinéticos en toros brown swiss |
| title_eng |
Effect of sperm cryopreservation on DNA fragmentation, viability, and kinetics parameters in Brown Swiss bulls |
| description |
Se evaluó mediante el sistema computarizado de análisis seminal (C.A.S.A), el efecto de la criopreservación espermática sobre la fragmentación del ADN, la viabilidad, y la cinética espermática. Se colectaron 76 eyaculados de 5 toros de la raza Brown Swiss del Banco Nacional de Semen de la UNALM. Para el análisis de la fragmentación del ADN se utilizó el Kit Sperm-Halomax® y para el análisis de la viabilidad espermática la tinción Hoeschst 333242/PI. Se evaluó si existió un cambio significativo entre los valores antes y después de la criopreservación para cada uno de los parámetros seminales evaluados utilizando la prueba T de muestras relacionadas, previa verificación de normalidad con la prueba de Shapiro-Wilk; en caso de presencia de no normalidad, se utilizó la prueba de rangos con signo de Wilcoxon. Se aplicó ajuste de Bonferroni para las comparaciones antes mencionadas. Todos los análisis se realizaron considerando 5 réplicas biológicas en el paquete estadístico SPSS v.23 con un 95% de confiabilidad. Se encontraron diferencias significativas en 16 de los 21 parámetros evaluados, se evidenció un aumento de la fragmentación del ADN del 3%, en el parámetro de viabilidad espermática se manifestó una disminución de los valores analizados y se observó la disminución de los valores de los siguientes parámetros motilidad, motilidad progresiva, motilidad rápida, al igual que los parámetros cinéticos VCL, VSL, VAP, DSL, DAP, ALH, BCF, HAC, STR. Sin embargo, se observó un incremento en los valores de motilidad local y espermatozoides inmóviles, atribuidos al efecto de la criopreservación seminal.
|
| description_eng |
The effect of sperm cryopreservation on DNA fragmentation, viability, and sperm kinetics was evaluated using a Computer Assisted Semen Analysis (C.A.S.A). 76 ejaculates were collected from 5 bulls of the Brown Swiss breed from the National Semen Bank of UNALM. For the analysis of DNA fragmentation, the Sperm-Halomax® Kit was used and for the analysis of the sperm viability Hoeschst 333242 / PI stain. Significant change before and after the cryopreservation for each one of the seminal parameters was evaluated using the T test of related samples, previous verification of normality with the Shapiro-Wilk test. In case data were not normal, the Wilcoxon signed rank test was used. The Bonferroni adjustment was applied for the referred above comparisons. All the analyses were made considering 5 biological replicas in the statistical package SPSS v.23 with 95% reliability. Significant differences were found in 16 of the 21 parameters evaluated, an increase in DNA fragmentation of 3% was evidenced, and decrease in the sperm viability parameter was manifested. Lower values of the following parameters motility, progressive motility, rapid motility was observed, as well as the kinetic parameters VCL, VSL, VAP, DSL, DAP, ALH, BCF, HAC, STR. However higher values of local motility and immobile sperm were observed, attributed to the effect of seminal cryopreservation.
|
| author |
Arbaiza-Barnechea, Martin Daniel Cabrera-Villanueva, Prospero Celestino |
| author_facet |
Arbaiza-Barnechea, Martin Daniel Cabrera-Villanueva, Prospero Celestino |
| topic |
Cryopreservation DNA fragmentation viability motility sperm kinetics Criopreservación fragmentación del ADN viabilidad motilidad cinética espermática |
| topic_facet |
Cryopreservation DNA fragmentation viability motility sperm kinetics Criopreservación fragmentación del ADN viabilidad motilidad cinética espermática |
| topicspa_str_mv |
Criopreservación fragmentación del ADN viabilidad motilidad cinética espermática |
| citationvolume |
13 |
| citationissue |
1 |
| citationedition |
Núm. 1 , Año 2021 : RECIA 13(1):ENERO-JUNIO 2021 |
| publisher |
Universidad de Sucre |
| ispartofjournal |
Revista Colombiana de Ciencia Animal - RECIA |
| source |
https://revistas.unisucre.edu.co/index.php/recia/article/view/e787 |
| language |
spa |
| format |
Article |
| rights |
https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ Revista Colombiana de Ciencia Animal - RECIA - 2021 info:eu-repo/semantics/openAccess http://purl.org/coar/access_right/c_abf2 |
| references |
Fatehi AN, Bevers MM, Schoevers E, Roelen BA, Colenbrander B, Gadella BM. DNA damage in bovine sperm does not block fertilization and early embryonic development but induces apoptosis after the first cleavages. J Androl. 2006; 27(2):176-188. https://doi.org/10.2164/jandrol.04152 Gadea J, Sellés E, Marco MA. The predictive value of porcine seminal parameters on fertility outcome under commercial conditions. Reprod Domest Anim. 2004; 39(5):303-308. https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2004.00513.x Davis RO, Drobnis EZ, Overstreet JW. Application of multivariate cluster, discriminate function, and stepwise regression analyses to variable selection and predictive modeling of sperm cryosurvival. Fertil Steril. 1995; 63(5):1051-1057. https://doi.org/10.1016/S0015-0282(16)57547-5 Tuli R, Schmidt-Baulain R, Holtz W. Computer-assisted motility assessment of spermatozoa from fresh and frozen—thawed semen of the bull, boar and goat Theriogenology. 1992; 38(3):487-490. https://doi.org/10.1016/0093-691X(92)90068-3 Karabinus DS, Evenson DP, Jost L, Baer R, Kaproth M. Comparison of semen quality in young and mature Holstein bulls measured by light microscopy and flow cytometry. J. Dairy Sci. 1990; 73(9):2364-2371. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(90)78919-9 Enciso M. La fragmentación del AND en espermatozoides de mamíferos. (Tesis doctoral) Universidad Autónoma de Madrid: España; 2009 http://hdl.handle.net/10486/4150 Ntemka A, Tsousis G, Brozos C, Boscos CM, Tsakmakidis IA. Breed differences of bull frozen‐thawed semen. Reprod Domest Anim. 2016; 51: 945-952. https://doi.org/10.1111/rda.12769 Amann RP, Katz DF. Andrology Lab Corner: Reflections on C.A.S.A after 25 years. J Androl. 2004; 25:317-325. https://doi.org/10.1002/j.1939-4640.2004.tb02793.x Khalil WA, El-Harairy MA, Zeidan AEB, Hassan MAE, Mohey-Elsaeed O. Evaluation of bull spermatozoa during and after cryopreservation: Structural and ultrastructural insights. International Journal of Veterinary Science and Medicine. 2018; 6:S49-S56. https://doi.org/10.1016/j.ijvsm.2017.11.001 Addad R, Freneau G, Resende L, Silva L. Evaluación clínica andrológica de toros nelore y tests de viavilidad espermática, integridad de acrosoma y fragmentación de cromatina a lo largo de tres estaciones de monta. Ciência Animal Brasileira. 2009; 10:1044-1054. https://www.revistas.ufg.br/vet/article/view/3395 Posado R, Hernández M, García JJ, Bartolomé DJ, López C, Gosálvez J. Evolución de la fragmentación del ADN en semen criopreservado de toros de Lidia. Arch Cootec. 2011; 60(231):441-444. http://doi.org/10.4321/S0004-05922011000300031 Duran EH, Morshedi M, Taylor S, Oehninger S. Sperm DNA quality predicts intrauterine insemination outcome: a prospective cohort study. Human Reproduction. 2002; 17(12):3122-3128. https://doi.org/10.1093/humrep/17.12.3122 Evenson DP, Darzynkiewicz Z, Melamed MR. Relation of mammalian sperm chromatin heterogeneity to fertility. Science. 1980; 210(4474):1131-1133. https://doi.org/10.1126/science.7444440 Larson KL, DeJonge CJ, Barnes AM, Jost LK, Evenson DP. Sperm chromatin structure assay parameters as predictors of failed pregnancy following assisted reproductive techniques. Hum Reprod. 2000; 15(8):1717-1722. https://doi.org/10.1093/humrep/15.8.1717 Johnson LA, Weitze KF, Fiser P, Maxwell WM. Storage of boar semen. Anim Reprod Sci. 2000; 62(1-3):143-172. https://doi.org/10.1016/S0378-4320(00)00157-3 Viñán DH, Alvarado ME. Adición de metil- β-ciclodextrina cargada de colesterol sobre la criopreservación de semen de toros Holstein Friesian. Revista De Investigaciones Veterinarias Del Perú. 2020; 30(4):1611-1618. https://doi.org/10.15381/rivep.v30i4.17159 Januskauska A, Johannisson A, Rodriguez-Martinez H. Assessment of sperm quality through fluorometry and sperm chromatin structure assay in relation to field fertility of frozen-thawed semen from Swedish AI bulls. Theriogenology. 2001; 55(4):947-961. https://doi.org/10.1016/S0093-691X(01)00456-3 Veloz DM. Evaluación de la calidad espermática de reproductores bovinos mediante el uso de sistemas de evaluación seminal convencional y sistema C.A.S.A (análisis seminal asistido por computadora) y su respuesta con la fertilidad por inseminación artificial. Tesis (Maestría). Universidad de Cuenca: Ecuador; 2017. http://dspace.ucuenca.edu.ec/handle/123456789/28466 Sundararaman M, Kalatharan J, Thilak J. Computer assisted semen analysis for quantification of motion characteristics of bull sperm during cryopreservation cycle. Vet World. 2012; 5(12):723-726. https://doi.org/10.5455/vetworld.2012.723-726 Morte MI, Rodrigues AM, Soares D, Rodrigues AS, Gamboa S, Ramalho-Santos J. The quantification of lipid and protein oxidation in stallion spermatozoa and seminal plasma: seasonal distinctions and correlations with DNA strand breaks, classical seminal parameters and stallion fertility. Anim Reprod Sci. 2008; 106(1-2):36-47. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2007.03.020 Muiño OR. Evaluación de la motilidad y viabilidad del semen bovino mediante el uso de sistemas C.A.S.A y citometría de flujo, identificación de subpoblaciones espermáticas. Tesis (Grado). Universidad de Santiago de Compostela: España; 2008. http://hdl.handle.net/10347/2406 Hirano Y, Shibahara H, Obara H, Suzuki T, Takamizawa S, Yamaguchi C, Tsunoda H, Sato I. Relationships between sperm motility characteristics assessed by the computer-aided sperm analysis (C.A.S.A) and fertilization rates in vitro. J Assist Reprod Genet. 2001; 18(4):213-218. https://doi.org/10.1023/A:1009420432234 Ormachea VE, Calsin CB, Zegarra OE. Cinética y morfometría espermática en semen congelado sexado y convencional de toros Brown Swiss. Revista De Investigaciones Veterinarias Del Perú. 2019; 30(1):500-506. https://doi.org/10.15381/rivep.v30i1.14696 Ancco G. Efecto de la motilidad espermática en la producción de embriones in vitro en bovinos. Tesis (Grado). Universidad Nacional Agraria la Molina: Ecuador; 2017. http://repositorio.lamolina.edu.pe/handle/UNALM/2898 Mora C, Mendez N. Evaluación espermática de ganado bovino mediante un sistema de análisis computacional (C.A.S.A.). Tlamati Sabiduría. 2016; 7:1-10. http://tlamati.uagro.mx/t7e2/241.pdf Quintín FJ, Hernández M, Sevilla M, Banzo P, Alabart JL, Serraller JM. Valoración reproductiva de toros jóvenes de testaje de raza Parda de montaña. AIDA. 2013. http://hdl.handle.net/10532/2275 Shanis BS, Check IJ, Bolendorf A, Interpretation and misinterpretation of semen parameters. Archives of Andrology Journal of Reproductive Systems. 2009; 23(3):213-227. https://doi.org/10.3109/01485018908986844 Bravo JA, Montanero J, Calero R, Roy TJ. Relación entre variables subjetivas e informatizadas del movimiento espermático del morueco. Archivos de Zootecnia. 2011; 60(232):1087-1094. http://doi.org/10.4321/S0004-05922011000400024 Holt WV. Basic aspects of frozen storage of semen. Anim Reprod Sci. 2000; 62(1-3):3-22. https://doi.org/10.1016/S0378-4320(00)00152-4 Watson PF. Recent developments and concepts in the cryopreservation of spermatozoa and the assessment of their post-thawing function. Reprod Fertil Dev. 1995; 7(4):871-891. https://doi.org/10.1071/rd9950871 |
| type_driver |
info:eu-repo/semantics/article |
| type_coar |
http://purl.org/coar/resource_type/c_6501 |
| type_version |
info:eu-repo/semantics/publishedVersion |
| type_coarversion |
http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85 |
| type_content |
Text |
| publishDate |
2020-11-11 |
| date_accessioned |
2020-11-11T00:00:00Z |
| date_available |
2020-11-11T00:00:00Z |
| url |
https://revistas.unisucre.edu.co/index.php/recia/article/view/e787 |
| url_doi |
https://doi.org/10.24188/recia.v13.n1.2021.787 |
| eissn |
2027-4297 |
| doi |
10.24188/recia.v13.n1.2021.787 |
| citationstartpage |
e787 |
| citationendpage |
e787 |
| url2_str_mv |
https://revistas.unisucre.edu.co/index.php/recia/article/download/e787/952 |
| _version_ |
1811200767830261760 |