Titulo:
Influencia de la sombra y de las micorrizas sobre el crecimiento de plantas de lulo (Solanum quitoense Lam.)
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Sumario:
El lulo es originario de los bosques andinos, donde crece bajo sombra parcial, asociado a micorrizas nativas. Se han establecido cultivos comerciales en ambientes de alta iluminación, lo que genera estrés. Para evaluar el crecimiento de plantas de lulo inoculadas con micorrizas y bajo condiciones de sombreado, se estableció un estudio en invernadero en Tunja, Colombia. Las plantas, se inocularon con Mycobiol® (combinación de Glomus sp., Entrophospora colombiana y Acaulospora mellea) y con Scutellospora heterogama, Acaulospora mellea y Glomus spp., individualmente. Sobre la mitad de las plantas micorr... Ver más
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Influencia de la sombra y de las micorrizas sobre el crecimiento de plantas de lulo (Solanum quitoense Lam.) Influence of shading and mycorrhizae on growth of lulo plants (Solanum quitoense Lam.) El lulo es originario de los bosques andinos, donde crece bajo sombra parcial, asociado a micorrizas nativas. Se han establecido cultivos comerciales en ambientes de alta iluminación, lo que genera estrés. Para evaluar el crecimiento de plantas de lulo inoculadas con micorrizas y bajo condiciones de sombreado, se estableció un estudio en invernadero en Tunja, Colombia. Las plantas, se inocularon con Mycobiol® (combinación de Glomus sp., Entrophospora colombiana y Acaulospora mellea) y con Scutellospora heterogama, Acaulospora mellea y Glomus spp., individualmente. Sobre la mitad de las plantas micorrizadas, se extendió una malla polisombra. A las plantas control no se les aplicaron micorrizas ni sombra. Tanto Glomus sp. como S. heterogama indujeron plantas 55% más altas que aquellas que no habían sido micorrizadas. Las plantas, en pleno sol tratadas con S. heterogama, Mycobiol, Glomus sp. y A. mellea, presentaron, respectivamente, 290%, 186%, 142% y 124,2% más área foliar que las plantas control. Se produjo una reducción de 37% en el peso específico de las hojas en plantas expuestas a la sombra, en relación con las plantas micorrizadas a plena exposición. Bajo sombra, las plantas disminuyeron 27% la acumulación de materia seca en relación con las plantas micorrizadas a libre exposición. Las plantas a pleno sol inoculadas con S. heterogama y con Glomus sp. produjeron 153% y 132% más materia seca que las plantas control. La inoculación con micorrizas compensó el efecto negativo de la sombra sobre el crecimiento de las plantas. The lulo plant (Solanum quitoense) native to Andean forests grows under partial shade in association with native mycorrhizae. In commercial cultivation lulo is often planted in full sun, which leads to plant stress. In order to evaluate the growth of lulo plants inoculated with mycorrhizae, under partial shade conditions, a greenhouse study was CARRIED OUT in Tunja, Colombia. The plants were inoculated with Mycobiol® (a combination of Glomus spp., Entrophospora colombiana, and Acaulospora mellea), Scutellospora heterogama alone, Acaulospora mellea alone, and Glomus spp. alone. Half of these inoculated plants were grown under a shade cloth, while the control plants were grown in full sun without mycorrhizae. Glomus spp. and S. heterogama induced full-sun plants 55% taller than in treatments without mycorrhizae. Full-sun plants treated with S. heterogama. Mycobiol, Glomus spp., and A. mellea respectively presented 290%, 186%, 142%, and 124% more leaf area than plants without mycorrhizae. There was a 37% reduction in specific leaf weight in shaded plants with respect to mycorrhizal plants in full sun. Shaded mycorrhizal plants also had 27% lower dry matter accumulation compared to plants in full sun. Fullsun plants inoculated with S. heterogama and with Glomus spp. produced 153% and 132% more dry matter than control plants. Inoculation with mycorrhizae compensated the negative effect of shade on plant growth. Casierra Posada, Fánor Peña Olmos, Jaime Peñaloza, Juan Roveda, Gabriel Sombreado Área foliar Peso específico de las hojas Materia seca Shading Leaf area Specific leaf weight Dry matter 16 1 Núm. 1 , Año 2013 :Revista U.D.C.A Actualidad & Divulgación Científica. Enero-Junio Artículo de revista Journal article 2013-06-30T00:00:00Z 2013-06-30T00:00:00Z 2013-06-30 application/pdf text/html Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales U.D.C.A Revista U.D.C.A Actualidad & Divulgación Científica 0123-4226 2619-2551 https://revistas.udca.edu.co/index.php/ruadc/article/view/859 10.31910/rudca.v16.n1.2013.859 https://doi.org/10.31910/rudca.v16.n1.2013.859 spa https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ 61 70 ALARCÓN, A.; FERRERA-CERRATO, R. 1999. Manejo de la micorriza arbuscular en sistemas de propagación de plantas frutícolas. Terra 17(3):179-191. BAYLIS, G.T.S. 1967. Experiments on the ecological significance of Phycomycetous mycorrhizas. New Phytol. 66:231-243. BOULLARD, B. 1960. La lumiere et les mycorrhizes. Ann. Biofog. 36:231-48. CARDONA, D.; SADEGHIAN, S. 2005. Beneficios del sombrío de guamo en suelos cafeteros. CENICAFÉ, Av. Técn. Cenicafé. 335:1-5. GERDEMANN, J.W.; NICOLSON, T.H. 1963. Spores of mycorhizal Endogone species extracted from soil by wet sieving and decanting. Trans. Brit. Mycol. Soc.46:235-244. GUARNASCHELLI, A.B.; GARAU, A.M.; CACCIA, F. 2006. Respuestas al déficit hídrico y lumínico durante el establecimiento de Salix matsudana x Salix alba 'A 13/44'. En: Actas Jornadas de Salicáceas. Buenos Aires. p.274-281. GIANINAZZI-PEARSON, V.; AZCÓN-AGUILAR, C. 1991. Fisiología de las micorrizas vesiculo-arbusculares. En: Olivares, J.; Barea J.M. (eds): Fijacion y movilizacion biologica de nutrientes. Vol. II. (Fijacion de N y micorrizas). Consejo Superior de Invest. Cient. Madrid. p.175-202. HARRIS, D.; PACOVSKY, R.S.; PAUL, E.A. 1985. Carbon economy of soybean-Rhizobium-Glomus associations. New Phytol. 73:71-80. HEPPER, C. 1977. A colorimetric method for estimating vesicular-arbuscular mycorrhizal infection in roots. J. Soil Biol. Biochem. 9(1):15-18. HUNT, R. 1990. Basic growth analysis. Plant growth analysis for beginners. Unwin Hyman. Boston. 110p. 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Centro de Desarrollo Tecnológico de Frutales, Manizales. p.27-36. MARSCHNER, H. 1991. Mechanisms of adaptation of mycorrhizal (Glomus fasiculatum) influence on plants to acid soils. Dev. Plant Soil Sci. 45:683-702. MCGEE, P.A.; FURBY, J.H. 1992. Formation and structure of mycorrhizas of seedlings of coachwood (Ceratopetalum apetalum). Austral. J. Bot. 40:291-304. MEDINA, C.I.; SÁNCHEZ, D.; CAMAYO, G.; LOBO, M.; MARTÍNEZ, E. 2008. Anatomía foliar comparativa de materiales de lulo (Solanum quitoense Lam.) con y sin espinas. Rev. Corpoica. 9(1):5-13. MENGE, J.A. 1983. Utilization of vesicular-arbuscular extension of the phosphorus depletion zone in mycorrhizal fungi in agriculture. Can. J. Bot. 61:1015- 1024. MOREIRA-SOUZA, M.; CARDOSO, E.J.B.N. 2002. Dependencia micorrízica de Araucaria angustifolia (Bert.) O. Ktze. sob doses de fósforo. Rev. Bras. Ciência do Solo. 26:905-912. NEHLS, U.; HAMPP, R. 2000. Carbon allocation in ectomycorrhizas. Physiol. Mol. Plant Pathol. 57:95-100. NIEMI, K.; JULKUNEN-TIITTO, R.; TEGELBERG, R.; HÄGGMAN, H. 2005. Light sources with different spectra affect root and mycorrhiza formation in scots pine in vitro. Tree Physiol. 25:123-128. PAZ, I.E.; SÁNCHEZ DE PRAGER, M. 2007. Relación entre la longitud de micelio externo de hongos micorrízicos y algunas propiedades del suelo bajo dos sistemas de sombrío en café, meseta de Popayán, Colombia. Rev. Biotecn. Sector Agrop. Agroind. 5(1):64-69. PENG, S.; EISSENSTAT, D.M.; GRAHAM, J.H.; WILLIAMS, K.; HODGE, N.C. 1993. Growth depression in mycorrhizal citrus at high-phosphorus supply. Plant Physiol. 101:1063-1071. PEREIRA, G.; SÁNCHEZ, M.; RÍOS, D.; HERRERA, M.A. 2001. Micorrizas vesículo arbusculares y su incidencia en el crecimiento de plántulas de Eucalyptus camaldulensis Den. Bosque. 22(2):39-44. ROSA, T.M.D.L.; APHALO, P.J.; LEHTO, T. 1998. Effects of far-red light on the growth, mycorrhizas and mineral nutrition of scots pine seedlings. Plant Soil.201:17-25. ROSA, T.M.D.L.; LEHTO, T.; APHALO, P.J. 1999. Does far-red light affect growth and mycorrhizae of Scots pine seedlings growing in forest soil? Plant Soil.211:259-268. ROVEDA, G.; CABRA, L.; RAMÍREZ, M.M.; PEÑARANDA, A. 2007. Efecto de las micorrizas arbusculares sobre la aclimatación y endurecimiento de microplántulas de mora (Rubus glaucus). Rev. Corpoica. 8(1):28-36. ROVEDA, G.; RAMÍREZ, M.M.; CABRA, L.; PEÑARANDA, A. 2009. Biofertilización en el cultivo de la mora. En: Barrero, L. (ed) Caracterización, evaluación y producción de material limpio de mora con alto valor agregado. Corpoica. Produmedios. p.43-56. SCHULZE, E.D.; BECK, E.; MÜLLER-HOHENSTEIN, K. 2002. Plant Ecology. Springer Verlag. Heidelberg. p.23-44. SÁNCHEZ DE PRAGER, M. 1999. Endomicorrizas en agroecosistemas colombianos. Universidad Nacional, Palmira. 226p. SIQUEIRA, J.O.; SAGGIN-JÚNIOR, O.J.; FLORESAYLAS, W.W.; GUIMARÃES, P.T.G. 1998. Arbuscular mycorrhizal inoculation and superphosphate application influence plant development and yield of coffee in Brazil. Mycorrhiza. 7(6):293-300. SMITH, S.; READ, D. 1997. Mycorrhizal symbiosis. 2nd ed. Academic Press, San Diego, 605p. SPRUGEL, D.G.; BROOKS, J.R.; HINCKLEY, T.M. 1996. Effects of light on shoot geometry and needle morphology in Abies amabilis. Tree Physiol. 16:91-98. SWISHER, M. 1999. Manual para los estudios de campo, Módulo 1 La Ecología de la Parcela. Universidad de la Florida. 84p. 37 TURK, M.A.; ASSAF, T.A.; HAMEED, K.M.; AL-TAWAHA, A.M. 2006. Significance of mycorrhizae. World J. Agr. Sci. 2(1):16-20. WRIGHT, D.P.; SCHOLES, J.D.; READ, D.J.; ROLFE, S.A. 2000. Changes in carbon allocation and expression of carbon transporter genes in Betula pendula Roth. colonized by an ectomycorrhizal fungus Paxillus involutus (Batsch). Fr. 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El lulo es originario de los bosques andinos, donde crece bajo sombra parcial, asociado a micorrizas nativas. Se han establecido cultivos comerciales en ambientes de alta iluminación, lo que genera estrés. Para evaluar el crecimiento de plantas de lulo inoculadas con micorrizas y bajo condiciones de sombreado, se estableció un estudio en invernadero en Tunja, Colombia. Las plantas, se inocularon con Mycobiol® (combinación de Glomus sp., Entrophospora colombiana y Acaulospora mellea) y con Scutellospora heterogama, Acaulospora mellea y Glomus spp., individualmente. Sobre la mitad de las plantas micorrizadas, se extendió una malla polisombra. A las plantas control no se les aplicaron micorrizas ni sombra. Tanto Glomus sp. como S. heterogama indujeron plantas 55% más altas que aquellas que no habían sido micorrizadas. Las plantas, en pleno sol tratadas con S. heterogama, Mycobiol, Glomus sp. y A. mellea, presentaron, respectivamente, 290%, 186%, 142% y 124,2% más área foliar que las plantas control. Se produjo una reducción de 37% en el peso específico de las hojas en plantas expuestas a la sombra, en relación con las plantas micorrizadas a plena exposición. Bajo sombra, las plantas disminuyeron 27% la acumulación de materia seca en relación con las plantas micorrizadas a libre exposición. Las plantas a pleno sol inoculadas con S. heterogama y con Glomus sp. produjeron 153% y 132% más materia seca que las plantas control. La inoculación con micorrizas compensó el efecto negativo de la sombra sobre el crecimiento de las plantas.
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The lulo plant (Solanum quitoense) native to Andean forests grows under partial shade in association with native mycorrhizae. In commercial cultivation lulo is often planted in full sun, which leads to plant stress. In order to evaluate the growth of lulo plants inoculated with mycorrhizae, under partial shade conditions, a greenhouse study was CARRIED OUT in Tunja, Colombia. The plants were inoculated with Mycobiol® (a combination of Glomus spp., Entrophospora colombiana, and Acaulospora mellea), Scutellospora heterogama alone, Acaulospora mellea alone, and Glomus spp. alone. Half of these inoculated plants were grown under a shade cloth, while the control plants were grown in full sun without mycorrhizae. Glomus spp. and S. heterogama induced full-sun plants 55% taller than in treatments without mycorrhizae. Full-sun plants treated with S. heterogama. Mycobiol, Glomus spp., and A. mellea respectively presented 290%, 186%, 142%, and 124% more leaf area than plants without mycorrhizae. There was a 37% reduction in specific leaf weight in shaded plants with respect to mycorrhizal plants in full sun. Shaded mycorrhizal plants also had 27% lower dry matter accumulation compared to plants in full sun. Fullsun plants inoculated with S. heterogama and with Glomus spp. produced 153% and 132% more dry matter than control plants. Inoculation with mycorrhizae compensated the negative effect of shade on plant growth.
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ALARCÓN, A.; FERRERA-CERRATO, R. 1999. Manejo de la micorriza arbuscular en sistemas de propagación de plantas frutícolas. Terra 17(3):179-191. BAYLIS, G.T.S. 1967. Experiments on the ecological significance of Phycomycetous mycorrhizas. New Phytol. 66:231-243. BOULLARD, B. 1960. La lumiere et les mycorrhizes. Ann. Biofog. 36:231-48. CARDONA, D.; SADEGHIAN, S. 2005. Beneficios del sombrío de guamo en suelos cafeteros. CENICAFÉ, Av. Técn. Cenicafé. 335:1-5. GERDEMANN, J.W.; NICOLSON, T.H. 1963. Spores of mycorhizal Endogone species extracted from soil by wet sieving and decanting. Trans. Brit. Mycol. Soc.46:235-244. GUARNASCHELLI, A.B.; GARAU, A.M.; CACCIA, F. 2006. Respuestas al déficit hídrico y lumínico durante el establecimiento de Salix matsudana x Salix alba 'A 13/44'. En: Actas Jornadas de Salicáceas. Buenos Aires. p.274-281. GIANINAZZI-PEARSON, V.; AZCÓN-AGUILAR, C. 1991. Fisiología de las micorrizas vesiculo-arbusculares. En: Olivares, J.; Barea J.M. 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Biofertilización en el cultivo de la mora. En: Barrero, L. (ed) Caracterización, evaluación y producción de material limpio de mora con alto valor agregado. Corpoica. Produmedios. p.43-56. SCHULZE, E.D.; BECK, E.; MÜLLER-HOHENSTEIN, K. 2002. Plant Ecology. Springer Verlag. Heidelberg. p.23-44. SÁNCHEZ DE PRAGER, M. 1999. Endomicorrizas en agroecosistemas colombianos. Universidad Nacional, Palmira. 226p. SIQUEIRA, J.O.; SAGGIN-JÚNIOR, O.J.; FLORESAYLAS, W.W.; GUIMARÃES, P.T.G. 1998. Arbuscular mycorrhizal inoculation and superphosphate application influence plant development and yield of coffee in Brazil. Mycorrhiza. 7(6):293-300. SMITH, S.; READ, D. 1997. Mycorrhizal symbiosis. 2nd ed. Academic Press, San Diego, 605p. SPRUGEL, D.G.; BROOKS, J.R.; HINCKLEY, T.M. 1996. Effects of light on shoot geometry and needle morphology in Abies amabilis. Tree Physiol. 16:91-98. SWISHER, M. 1999. Manual para los estudios de campo, Módulo 1 La Ecología de la Parcela. Universidad de la Florida. 84p. 37 TURK, M.A.; ASSAF, T.A.; HAMEED, K.M.; AL-TAWAHA, A.M. 2006. Significance of mycorrhizae. World J. Agr. Sci. 2(1):16-20. WRIGHT, D.P.; SCHOLES, J.D.; READ, D.J.; ROLFE, S.A. 2000. Changes in carbon allocation and expression of carbon transporter genes in Betula pendula Roth. colonized by an ectomycorrhizal fungus Paxillus involutus (Batsch). Fr. Plant Cell Environ. 23:39-49. |
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