Titulo:
Seroprevalencia de leptospirosis y brucelosis en búfalos de agua (Bubalus bubalis) en Tierralta Córdoba, Colombia
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Sumario:
En la producción zootécnica, la brucelosis y la leptospirosis ocasionan problemas reproductivos y son una limitante en salud y en producción animal. El objetivo fue determinar la presencia de anticuerpos contra Leptospira spp. y Brucella abortus, en una población bufalera, en el municipio de Tierralta, Córdoba. Se realizó un estudio descriptivo de corte transversal, que incluyó un total de 144 búfalos de la raza Murrah, destinados al doble propósito. Para el diagnóstico de Leptospira spp., se implementó la prueba de aglutinación microscópica, con 13 serogrupos, 19 serovares pertenecientes a 5 especies de Leptospira patógenas y para brucelosis Rosa de Bengala y C-Elisa. La seroprevalencia para Leptospira spp. fue del 87,5 %, el serogrupo Min... Ver más
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25
2022-12-31
Mariam Raquel-Montes, Merly Elena Zambrano, Alfonso Calderón-Rangel, Virginia Rodríguez-Rodríguez, Camilo Guzmán-Terán - 2022
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Seroprevalencia de leptospirosis y brucelosis en búfalos de agua (Bubalus bubalis) en Tierralta Córdoba, Colombia Raquel-Montes, Mariam Zambrano, Merly Elena Calderón-Rangel, Alfonso Rodríguez-Rodríguez, Virginia Guzmán-Terán, Camilo Anticuerpos Brucella abortus Leptospira spp. Spirochaetales Zoonosis Antibodies Brucella abortus Leptospira spp. Spirochaetales Zoonoses |
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Seroprevalence of leptospirosis and brucellosis in water buffaloes (Bubalus bubalis) in Tierralta Cordoba, Colombia |
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En la producción zootécnica, la brucelosis y la leptospirosis ocasionan problemas reproductivos y son una limitante en salud y en producción animal. El objetivo fue determinar la presencia de anticuerpos contra Leptospira spp. y Brucella abortus, en una población bufalera, en el municipio de Tierralta, Córdoba. Se realizó un estudio descriptivo de corte transversal, que incluyó un total de 144 búfalos de la raza Murrah, destinados al doble propósito. Para el diagnóstico de Leptospira spp., se implementó la prueba de aglutinación microscópica, con 13 serogrupos, 19 serovares pertenecientes a 5 especies de Leptospira patógenas y para brucelosis Rosa de Bengala y C-Elisa. La seroprevalencia para Leptospira spp. fue del 87,5 %, el serogrupo Mini fue el de mayor frecuencia, pero Grippotyphosa presentó el mayor título. El 16,67 % de los búfalos evaluados presentaron títulos iguales o superiores a 1:800, asociados con infección actual o reciente. La alta seroprevalencia, se puede deber a las características ambientales de la zona, que brinda las condiciones favorables para el crecimiento y el mantenimiento de este patógeno que, sumado al comportamiento de los búfalos de revolcarse, los hace propensos a las infecciones con bacterias del género Leptospira sp., porque a menudo, las fuentes de agua están contaminadas por este patógeno. La seroprevalencia contra B. abortus por Rosa de Bengala y Elisa-C fue del 2,08 %. Todos los títulos determinados corresponden a procesos infecciosos. No hubo signos clínicos de enfermedad y la carencia de registros productivos no permitió determinar el efecto sobre los parámetros reproductivos.
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In animal production, brucellosis and leptospirosis cause reproductive problems and limit animal health and production. The objective was to determine the presence of antibodies against Leptospira spp. and Brucella abortus in a buffalo population in the municipality of Tierralta, Cordoba. A descriptive, transversal study was carried out including a population of 144 Murrah´s breed buffalos destined for beef and milk production. For the Leptospira spp. diagnostic, was used a rapid slide agglutination test with 13 serogrups and 19 serovars belonging to 5 pathogenic Leptospira species was implemented and for Brucella abortus Rose Bengal and C-Elisa was used. Seroprevalence of Leptospira spp. was 87,5 %, serogrup Mini was the most frequent, but Grippotyphosa showed the higher titer. The 16,67 % of the buffaloes evaluated presented titles equal to or above than 1:800 associated with current or recent infection. High seroprevalence may be due to environmental characteristics of the zone, which gives favorable conditions for the growth and maintenance of this pathogen, these factors in conjunction with the habit of wallowing makes them prone to suffering infections caused by bacteria of the genera Leptospira sp. since water sources are often contaminated. Seroprevalence against B. abortus by Rose-Bengal and C-Elisa was 2,08 %, the determined titers correspond to infectious processes. There were no clinical manifestations of disease and the effects on reproductive parameters were not determined because of the lack of productive registries.
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ADESIYUN, A.A.; HULL-JACKSON, C.; CLARKE, N.; WHITTINGTON, C.; SEEPERSADSINGH, N. 2009. Leptospirosis in water buffalo (Bubalus bubalis) in Trinidad. Veterinarski Arhiv. 79(1):77-86. 2. AGUILAR-BAROJAS, S. 2005. Fórmulas para el cálculo de la muestra en investigaciones de salud. Salud en Tabasco. 11(1-2):333-338. 3. ÁLVAREZ-HERNÁNDEZ, N.E.; DÍAZ-FLORES, M.; ORTIZ-REYNOSO, M. 2015. Brucelosis, una zoonosis frecuente. Medicina e Investigación. 3(2):129-133. https://doi.org/10.1016/j.mei.2015.07.002 4. ANDERSON, E.C.; ROWE, L.W. 1998. The prevalence of antibody to the viruses of bovine virus diarrhoea, bovine herpes virus 1, rift valley fever, ephemeral fever and bluetongue and to Leptospira sp in free-ranging wildlife in Zimbabwe. Epidemiology & Infection. 121(2):441-449. https://doi.org/10.1017/s0950268898001289 5. BETANCUR HURTADO, C.; ORREGO URIBE, A.; GONZÁLEZ TOUS, M. 2013. Seroepidemiología de la leptospirosis en bovinos con trastornos reproductivos en el municipio de Montería, Colombia. Revista de Medicina Veterinaria. 26:47-55. https://doi.org/10.19052/mv.2633 6. CALDERÓN, A.; RODRIGUEZ, V.; MÁTTAR, S.; ARRIETA, G. 2014. Leptospirosis in pigs, dogs, rodents, humans, and water in an area of the Colombian tropics. Tropical Animal Health and Production. 46:427-432. https://doi.org/10.1007/s11250-013-0508-y 7. CALDERÓN, A.; TIQUE, V.; ENSUNCHO, C.; RODRIGUEZ, V. 2010. Seroprevalencia de Brucella abortus en búfalos de agua (Bubalus bubalis) en el municipio de Lorica, Córdoba. Revista U.D.C.A Actualidad & Divulgación Científica. 13(2):125-132. https://doi.org/10.31910/rudca.v13.n2.2010.740 8. CILIA, G.; BERTELLONI, F.; FRATINI, F. 2020. Leptospira Infections in domestic and wild animals. Pathogens. 9(7):573. https://doi.org/10.3390/pathogens9070573 9. COGOLLO LARA, C.A. 2012. Por el Tierralta que queremos un gobierno del presente para construir el futuro que necesitamos. Plan de desarrollo de Tierralta “Por ustedes” 2012-2015. Secretaria de Planeación Municipal, municipio de Tierralta, departamento de Córdoba. 361p. Disponible desde Internet en: https://repositoriocdim.esap.edu.co/bitstream/handle/123456789/23843/28318-1.pdf?sequence=1&isAllowed=y 10. CONGRESO NACIONAL DE COLOMBIA. 1989. Ley 84 de 1989. Por la cual se adopta el Estatuto Nacional de Protección de los Animales y se crean unas contravenciones y se regula lo referente a su procedimiento y competencia. Estatuto Nacional de Protección de Animales. (Colombia). 15p. 11. COSTA, F.; HAGAN, J.E.; CALCAGNO, J.; KANE, M.; TORGERSON, P.; MARTINEZ-SILVEIRA, M.S.; STEIN, C.; ABELA-RIDDER, B.; KO, A.I. 2015. Global morbidity and mortality of leptospirosis: A systematic review. PLoS Neglected Tropical Diseases. 17(9):e0003898. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0003898 12. CRUVINEL, V.R.N.; ZOLNIKOV, T.R.; BASHASH, M.; MARQUES, C.P.; SCOTT, J.A. 2019. Waterborne diseases in waste pickers of estrutural, Brazil, the second largest open-air dumpsite in world. Waste Management. 99:71-78. https://doi.org/10.1016/j.wasman.2019.08.035 13. ENSUNCHO-HOYOS, C.; RODRÍGUEZ-RODRÍGUEZ, V.; PÉREZ-DORIA, A.; VERGARA, O.; CALDERÓN-RANGEL, A. 2017. Epidemiology behavior of leptospirosis in Ciénaga de Oro, Córdoba (Colombia). Tropical Animal Health and Production. 49:1345-1351. https://doi.org/10.1007/s11250-017-1332-6 14. FAINE, S.; ADLER, B.; BOLIN, C.; PEROLAT, P. 1999. Leptospira and leptospirosis. 2ª edition. Medisci Press (Melbourne). 295p. 15. FAVERO, A.C.M.; PINHEIRO, S.R.; VASCONCELLOS, S.A.; MORAIS, Z.M.; FERREIRA, F.; FERREIRA NETO, J.S. 2002. Sorovares de leptospiras predominantes em exames serológicos de bubalinos, ovinos, caprinos, equinos, suinos e cães de diversos estados brasileiros. Ciencia Rural. 32(4):613-619. https://doi.org/10.1590/S0103-84782002000400011 16. GÓMEZ, L.B.; SALTAREN, C.A.; DÍAZ, A.M.T.; ROBALINO, V.M.P.; LUCERO, P.S.A. 2018. Cepario autóctono de leptospiras en la prueba de micro–aglutinación. Correo Científico Médico. 22(1):50-65. 17. GONZÁLEZ GONTOFALLA, F.; RIVERA PIRELA, S. 2015. Caracterización de la leptospirosis bovina en Venezuela. Revisión breve sobre la enfermedad. REDVET. 16(2):1-22. 18. HAAKE, D.A.; LEVETT, P.N. 2015. Leptospirosis in Humans. In: Adler, B. (ed.). Leptospira and Leptospirosis. Current Topics in Microbiology and Immunology. Springer (Berlin, Heidelberg). 387:65-97. https://doi.org/10.1007/978-3-662-45059-8_5 19. HAJIKOLAEI, M.R.H.; GHORBANPOUR, M.; ABDOLLAPOU, G. 2006. Seroprevalence of leptospiral infection in buffalo (Bubalus bubalis). Bulletin- Veterinary Institute in Pulawy. 50(3):341-344. 20. HERRERA, B. 2007. Leptospirosis, interpretación de resultados serológicos en animales. Disponible desde Internet en: http://www.produccion-animal.com.ar/sanidad_intoxicaciones_metabolicos/enfermedades_reproduccion/55-interpretacion_leptospira.pdf (con acceso 04/02/2021). 21. INSTITUTO COLOMBIANO AGROPECUARIO, ICA. 2020a. Censo Pecuario. Disponible desde Internet en: https://www.ica.gov.co/areas/pecuaria/servicios/epidemiologia-veterinaria/censos-2016/censo-2018.aspx (con acceso 04/02/2021). 22. INSTITUTO COLOMBIANO AGROPECUARIO, ICA. 2020b. Resolución No 75495. Medidas sanitarias para la prevención y el control de la brucelosis bovina causada por Brucella abortus en las especies bovina, bufalina, ovina, caprina, porcina y equina en Colombia. Disponible desde Internet en: https://www.ica.gov.co/getattachment/b782a028-4270-49ae-a2ae-6ae9994ab20d/2020R75495.aspx (con acceso 04/02/2021). 23. JACOBO, R.A.; CIPOLINI, M.F.; MARTÍNEZ, D.E.; DELLAMEA, M.; DRAGHI, M.G. 2009. Identificación de serovares de Leptospira spp en búfalos de Corrientes, Argentina. Revista Veterinaria. 20(2):126-127. http://dx.doi.org/10.30972/vet.2021862 24. LANGONI, H.; DEL FAVA, C.; DE GOUVÊA CABRAL, K.; VIEIRA DA SILVA, A.; PACHECO CHAGAS, S.A. 1999. Aglutininas antileptospíricas em búfalos do Vale do Ribeira, Estado de São Paulo. Ciencia Rural. 29(2):305-307. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84781999000200019 25. MARIÑO, O.; RUEDA, E.; OSORIO, C.; CALDERÓN, C. 2004. Evaluación de metodologías diagnósticas para brucelosis en población de búfalos del Magdalena Medio, Colombia. Revista FEDEGAN. 84:214-218. 26. MARQUEZ, A.; DJELOUADJI, Z.; LATTARD, V.; KODJO, A. 2017. Overview of laboratory methods to diagnose Leptospirosis and to identify and to type leptospires. International Microbiology. 20(4):184-193. https://doi.org/10.2436/20.1501.01.302 27. MARTÍNEZ-REINA, A.M.; DORIA-RAMOS, M.; GARCÍA-JIMÉNEZ, J.; SALCEDO-CARRASCAL, E.; HERRERA-PÉREZ, N.; CARRASCAL-TRIANA, E.L. 2020. Caracterización técnica y económica del sistema de producción de búfalos Bubalus bubalis en el departamento de Córdoba de Colombia. Archivos de Zootecnia. 69(268):444-452. https://doi.org/10.21071/az.v69i268.5392 28. MATHIAS, L.A.; GIRIO, R.J.S.; DUARTE, J.M.B. 1999. Serosurvey for Antibodies against Brucella abortus and Leptospira interrogans in pampas deer from Brazil. Journal Wildlife Diseases. 35(1):112-114. https://doi.org/10.7589/0090-3558-35.1.112 29. MOTTA GIRALDO, J.L.; CLAVIJO HOYOS, J.A.; WALTERO GARCÍA, I.; ABELEDO, M.A. 2014. Prevalencia de anticuerpos a Brucella abortus, Leptospira sp. y Neospora caninum en hatos bovinos y bubalinos en el Departamento de Caquetá, Colombia. Revista de Salud Animal. 36(2):80-89. 30. MUSSO, D.; LA SCOLA, B. 2013. Laboratory diagnosis of leptospirosis: a challenge. Journal of Microbiology, Immunology and Infection. 46(4):245-252. https://doi.org/10.1016/j.jmii.2013.03.001 31. NAPOLITANO, F.; PACELLI, C.; GRASSO, F.; BRAGHIERI, A.; DE ROSA, G. 2013. The behavior and welfare of buffaloes (Bubalus bubalis) in modern dairy enterprises. Animal. 7(10):1704-1713. https://doi.org/10.1017/S1751731113001109 32. OCHOA, J.E.; SÁNCHEZ, A.; RUIZ, I. 2000. Epidemiología de la leptospirosis en una zona andina de producción pecuaria. Revista Panamericana de Salud Pública. 7(5):325-331. 33. OLIVEIRA, P.R.F.; SOARES, L.B.F.; BORGES, J.M.; BARROSA, N. DE C.; LANGONI, H.; BRANDESPIM, D.F.; JUNIOR, J.W.P.; MOTA, R.A. 2018. Occurrence of serological reactions for serogroup Sejroe (CTG and Prajtino) in female buffalo in the state of Pernambuco, Brazil. Brazilian Journal of Microbiology. 49(4):795-800. https://doi.org/10.1016/j.bjm.2018.02.007 34. OSPINA-PINTO, M.C.; RINCÓN-PARDO, M.; SOLER-TOVAR, D.; HERNÁNDEZ-RODRÍGUEZ, P. 2019. Alteration of the reproductive indicators by the presence of Leptospira spp. in Sows of Swine Farms. Acta Scientiae Veterinariae. 47:1628. https://doi.org/10.22456/1679-9216.89894 35. PÉREZ-GARCÍA, J.; AGUDELO-FLÓREZ, P.; PARRA-HENAO, G.J.; OCHOA, J.E.; ARBOLEDA, M. 2019. Incidencia y subregistro de casos de leptospirosis diagnosticados con tres métodos diferentes en Urabá, Colombia. Biomédica. 39(Supl.1):150-162. https://doi.org/10.7705/biomedica.v39i0.4577 36. PHILLIPS, J.A. 2019. Leptospirosis. Workplace Health & Safety. 67(3):148. https://doi.org/10.1177/2165079918818582 37. PULIDO-VILLAMARÍN, A.; CASTAÑEDA-SALAZAR, R.; MENDOZA-GÓMEZ, M.F.; VIVAS-DÍAZ, L. 2019. Presencia de anticuerpos frente a algunos patógenos de interés zoonótico en cuatro granjas porcícolas de Cundinamarca, Colombia. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú. 30(1):446-454. http://dx.doi.org/10.15381/rivep.v30i1.15702 38. ROCHA, K. DE S.; DE SOUZA LIMA, M.; SOUZA DA PAZ, G.; LANGONI, H.; GUIMARÃES DE MORAES, C.C. 2019. Detecção de anticorpo anti-Brucella sp. e anti-Leptospira spp. em búfalos (Bubalus bubalis) abatidos em matadouro na cidade de Belém, Pará. Revista de Ciências Agrárias. 62. http://dx.doi.org/10.22491/rca.2019.3046 39. SCHNEIDER, M.C.; NAJERA, P.; PEREIRA, M.M.; MACHADO, G.; DOS ANJOS, C.B.; RODRIGUES, R.O.; CAVAGNI, G.M.; MUÑOZ-ZANZI, C.; CORBELLINI, L.G.; LEONE, M.; BUSS, D.F.; ALDIGHIERI, S.; ESPINAL, M.A. 2015. Leptospirosis in Rio Grande do Sul, Brazil: An Ecosystem Approach in the Animal-Human Interface. PLoS Neglected Tropical Diseases. 9(11):e0004095. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0004095 40. SIMÓN, L.; GALLOSO, M. 2011. Presencia y perspectivas de los búfalos en Cuba. Pastos y Forrajes. 34(1):3-20. 41. VIANA, R.B.; DEL FAVA, C.; MOURA, A.C.B.; CARDOSO, E.C.; DE ARAÚJO, C.V.; MONTEIRO, B.M.; PITUCO, E.M.; VASCONCELLOS, S.A. 2009. Ocorrência de anticorpos anti-neospora caninum, Brucella sp. E Leptospira spp. em búfalos (Bubalus bubalis) criados na amazônia. Arquivos do Instituto Biológico. 76(3):453-457. https://doi.org/10.1590/1808-1657v76p4532009 42. WANG, X.; JIANG, H. 2020. Epidemiological characteristics of global human brucellosis. Chinese Journal of Epidemiology. 41(10):1717-1722. https://doi.org/10.3760/cma.j.cn112338-20191022-00751 43. WORLD HEALTH ORGANIZATION, WHO. 2003. Human leptospirosis: guidance for diagnosis, surveillance and control. World Health Organization (Malta). 109p. 44. ZAKI, A.M.; HOD, R.; SHAMSUSAH, N.A.; ISA, Z.M.; BEJO, S.K.; AGUSTAR, H.K. 2020. Detection of Leptospira kmetyi at recreational areas in Peninsular Malaysia. Environmental Monitoring and Assessment. 192(11):703. https://doi.org/10.1007/s10661-020-08639-x |
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Seroprevalencia de leptospirosis y brucelosis en búfalos de agua (Bubalus bubalis) en Tierralta Córdoba, Colombia Seroprevalence of leptospirosis and brucellosis in water buffaloes (Bubalus bubalis) in Tierralta Cordoba, Colombia En la producción zootécnica, la brucelosis y la leptospirosis ocasionan problemas reproductivos y son una limitante en salud y en producción animal. El objetivo fue determinar la presencia de anticuerpos contra Leptospira spp. y Brucella abortus, en una población bufalera, en el municipio de Tierralta, Córdoba. Se realizó un estudio descriptivo de corte transversal, que incluyó un total de 144 búfalos de la raza Murrah, destinados al doble propósito. Para el diagnóstico de Leptospira spp., se implementó la prueba de aglutinación microscópica, con 13 serogrupos, 19 serovares pertenecientes a 5 especies de Leptospira patógenas y para brucelosis Rosa de Bengala y C-Elisa. La seroprevalencia para Leptospira spp. fue del 87,5 %, el serogrupo Mini fue el de mayor frecuencia, pero Grippotyphosa presentó el mayor título. El 16,67 % de los búfalos evaluados presentaron títulos iguales o superiores a 1:800, asociados con infección actual o reciente. La alta seroprevalencia, se puede deber a las características ambientales de la zona, que brinda las condiciones favorables para el crecimiento y el mantenimiento de este patógeno que, sumado al comportamiento de los búfalos de revolcarse, los hace propensos a las infecciones con bacterias del género Leptospira sp., porque a menudo, las fuentes de agua están contaminadas por este patógeno. La seroprevalencia contra B. abortus por Rosa de Bengala y Elisa-C fue del 2,08 %. Todos los títulos determinados corresponden a procesos infecciosos. No hubo signos clínicos de enfermedad y la carencia de registros productivos no permitió determinar el efecto sobre los parámetros reproductivos. In animal production, brucellosis and leptospirosis cause reproductive problems and limit animal health and production. The objective was to determine the presence of antibodies against Leptospira spp. and Brucella abortus in a buffalo population in the municipality of Tierralta, Cordoba. A descriptive, transversal study was carried out including a population of 144 Murrah´s breed buffalos destined for beef and milk production. For the Leptospira spp. diagnostic, was used a rapid slide agglutination test with 13 serogrups and 19 serovars belonging to 5 pathogenic Leptospira species was implemented and for Brucella abortus Rose Bengal and C-Elisa was used. Seroprevalence of Leptospira spp. was 87,5 %, serogrup Mini was the most frequent, but Grippotyphosa showed the higher titer. The 16,67 % of the buffaloes evaluated presented titles equal to or above than 1:800 associated with current or recent infection. High seroprevalence may be due to environmental characteristics of the zone, which gives favorable conditions for the growth and maintenance of this pathogen, these factors in conjunction with the habit of wallowing makes them prone to suffering infections caused by bacteria of the genera Leptospira sp. since water sources are often contaminated. Seroprevalence against B. abortus by Rose-Bengal and C-Elisa was 2,08 %, the determined titers correspond to infectious processes. There were no clinical manifestations of disease and the effects on reproductive parameters were not determined because of the lack of productive registries. Raquel-Montes, Mariam Zambrano, Merly Elena Calderón-Rangel, Alfonso Rodríguez-Rodríguez, Virginia Guzmán-Terán, Camilo Anticuerpos Brucella abortus Leptospira spp. Spirochaetales Zoonosis Antibodies Brucella abortus Leptospira spp. Spirochaetales Zoonoses 25 2 Núm. 2 , Año 2022 :Revista U.D.C.A Actualidad & Divulgación Científica. Julio-Diciembre Artículo de revista Journal article 2022-12-31T00:00:00Z 2022-12-31T00:00:00Z 2022-12-31 text/xml application/pdf Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales U.D.C.A Revista U.D.C.A Actualidad & Divulgación Científica 0123-4226 2619-2551 https://revistas.udca.edu.co/index.php/ruadc/article/view/1904 10.31910/rudca.v25.n2.2022.1904 https://doi.org/10.31910/rudca.v25.n2.2022.1904 spa http://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0 Mariam Raquel-Montes, Merly Elena Zambrano, Alfonso Calderón-Rangel, Virginia Rodríguez-Rodríguez, Camilo Guzmán-Terán - 2022 Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0. ADESIYUN, A.A.; HULL-JACKSON, C.; CLARKE, N.; WHITTINGTON, C.; SEEPERSADSINGH, N. 2009. Leptospirosis in water buffalo (Bubalus bubalis) in Trinidad. Veterinarski Arhiv. 79(1):77-86. 2. AGUILAR-BAROJAS, S. 2005. Fórmulas para el cálculo de la muestra en investigaciones de salud. Salud en Tabasco. 11(1-2):333-338. 3. ÁLVAREZ-HERNÁNDEZ, N.E.; DÍAZ-FLORES, M.; ORTIZ-REYNOSO, M. 2015. Brucelosis, una zoonosis frecuente. Medicina e Investigación. 3(2):129-133. https://doi.org/10.1016/j.mei.2015.07.002 4. ANDERSON, E.C.; ROWE, L.W. 1998. The prevalence of antibody to the viruses of bovine virus diarrhoea, bovine herpes virus 1, rift valley fever, ephemeral fever and bluetongue and to Leptospira sp in free-ranging wildlife in Zimbabwe. Epidemiology & Infection. 121(2):441-449. https://doi.org/10.1017/s0950268898001289 5. BETANCUR HURTADO, C.; ORREGO URIBE, A.; GONZÁLEZ TOUS, M. 2013. Seroepidemiología de la leptospirosis en bovinos con trastornos reproductivos en el municipio de Montería, Colombia. Revista de Medicina Veterinaria. 26:47-55. https://doi.org/10.19052/mv.2633 6. CALDERÓN, A.; RODRIGUEZ, V.; MÁTTAR, S.; ARRIETA, G. 2014. Leptospirosis in pigs, dogs, rodents, humans, and water in an area of the Colombian tropics. Tropical Animal Health and Production. 46:427-432. https://doi.org/10.1007/s11250-013-0508-y 7. CALDERÓN, A.; TIQUE, V.; ENSUNCHO, C.; RODRIGUEZ, V. 2010. Seroprevalencia de Brucella abortus en búfalos de agua (Bubalus bubalis) en el municipio de Lorica, Córdoba. Revista U.D.C.A Actualidad & Divulgación Científica. 13(2):125-132. https://doi.org/10.31910/rudca.v13.n2.2010.740 8. CILIA, G.; BERTELLONI, F.; FRATINI, F. 2020. Leptospira Infections in domestic and wild animals. Pathogens. 9(7):573. https://doi.org/10.3390/pathogens9070573 9. COGOLLO LARA, C.A. 2012. Por el Tierralta que queremos un gobierno del presente para construir el futuro que necesitamos. Plan de desarrollo de Tierralta “Por ustedes” 2012-2015. Secretaria de Planeación Municipal, municipio de Tierralta, departamento de Córdoba. 361p. Disponible desde Internet en: https://repositoriocdim.esap.edu.co/bitstream/handle/123456789/23843/28318-1.pdf?sequence=1&isAllowed=y 10. CONGRESO NACIONAL DE COLOMBIA. 1989. Ley 84 de 1989. Por la cual se adopta el Estatuto Nacional de Protección de los Animales y se crean unas contravenciones y se regula lo referente a su procedimiento y competencia. Estatuto Nacional de Protección de Animales. (Colombia). 15p. 11. COSTA, F.; HAGAN, J.E.; CALCAGNO, J.; KANE, M.; TORGERSON, P.; MARTINEZ-SILVEIRA, M.S.; STEIN, C.; ABELA-RIDDER, B.; KO, A.I. 2015. Global morbidity and mortality of leptospirosis: A systematic review. PLoS Neglected Tropical Diseases. 17(9):e0003898. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0003898 12. CRUVINEL, V.R.N.; ZOLNIKOV, T.R.; BASHASH, M.; MARQUES, C.P.; SCOTT, J.A. 2019. Waterborne diseases in waste pickers of estrutural, Brazil, the second largest open-air dumpsite in world. Waste Management. 99:71-78. https://doi.org/10.1016/j.wasman.2019.08.035 13. ENSUNCHO-HOYOS, C.; RODRÍGUEZ-RODRÍGUEZ, V.; PÉREZ-DORIA, A.; VERGARA, O.; CALDERÓN-RANGEL, A. 2017. Epidemiology behavior of leptospirosis in Ciénaga de Oro, Córdoba (Colombia). Tropical Animal Health and Production. 49:1345-1351. https://doi.org/10.1007/s11250-017-1332-6 14. FAINE, S.; ADLER, B.; BOLIN, C.; PEROLAT, P. 1999. Leptospira and leptospirosis. 2ª edition. Medisci Press (Melbourne). 295p. 15. FAVERO, A.C.M.; PINHEIRO, S.R.; VASCONCELLOS, S.A.; MORAIS, Z.M.; FERREIRA, F.; FERREIRA NETO, J.S. 2002. Sorovares de leptospiras predominantes em exames serológicos de bubalinos, ovinos, caprinos, equinos, suinos e cães de diversos estados brasileiros. Ciencia Rural. 32(4):613-619. https://doi.org/10.1590/S0103-84782002000400011 16. GÓMEZ, L.B.; SALTAREN, C.A.; DÍAZ, A.M.T.; ROBALINO, V.M.P.; LUCERO, P.S.A. 2018. Cepario autóctono de leptospiras en la prueba de micro–aglutinación. Correo Científico Médico. 22(1):50-65. 17. GONZÁLEZ GONTOFALLA, F.; RIVERA PIRELA, S. 2015. Caracterización de la leptospirosis bovina en Venezuela. Revisión breve sobre la enfermedad. REDVET. 16(2):1-22. 18. HAAKE, D.A.; LEVETT, P.N. 2015. Leptospirosis in Humans. In: Adler, B. (ed.). Leptospira and Leptospirosis. Current Topics in Microbiology and Immunology. Springer (Berlin, Heidelberg). 387:65-97. https://doi.org/10.1007/978-3-662-45059-8_5 19. HAJIKOLAEI, M.R.H.; GHORBANPOUR, M.; ABDOLLAPOU, G. 2006. Seroprevalence of leptospiral infection in buffalo (Bubalus bubalis). Bulletin- Veterinary Institute in Pulawy. 50(3):341-344. 20. HERRERA, B. 2007. Leptospirosis, interpretación de resultados serológicos en animales. Disponible desde Internet en: http://www.produccion-animal.com.ar/sanidad_intoxicaciones_metabolicos/enfermedades_reproduccion/55-interpretacion_leptospira.pdf (con acceso 04/02/2021). 21. INSTITUTO COLOMBIANO AGROPECUARIO, ICA. 2020a. Censo Pecuario. Disponible desde Internet en: https://www.ica.gov.co/areas/pecuaria/servicios/epidemiologia-veterinaria/censos-2016/censo-2018.aspx (con acceso 04/02/2021). 22. INSTITUTO COLOMBIANO AGROPECUARIO, ICA. 2020b. Resolución No 75495. Medidas sanitarias para la prevención y el control de la brucelosis bovina causada por Brucella abortus en las especies bovina, bufalina, ovina, caprina, porcina y equina en Colombia. Disponible desde Internet en: https://www.ica.gov.co/getattachment/b782a028-4270-49ae-a2ae-6ae9994ab20d/2020R75495.aspx (con acceso 04/02/2021). 23. JACOBO, R.A.; CIPOLINI, M.F.; MARTÍNEZ, D.E.; DELLAMEA, M.; DRAGHI, M.G. 2009. Identificación de serovares de Leptospira spp en búfalos de Corrientes, Argentina. Revista Veterinaria. 20(2):126-127. http://dx.doi.org/10.30972/vet.2021862 24. LANGONI, H.; DEL FAVA, C.; DE GOUVÊA CABRAL, K.; VIEIRA DA SILVA, A.; PACHECO CHAGAS, S.A. 1999. Aglutininas antileptospíricas em búfalos do Vale do Ribeira, Estado de São Paulo. Ciencia Rural. 29(2):305-307. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84781999000200019 25. MARIÑO, O.; RUEDA, E.; OSORIO, C.; CALDERÓN, C. 2004. Evaluación de metodologías diagnósticas para brucelosis en población de búfalos del Magdalena Medio, Colombia. Revista FEDEGAN. 84:214-218. 26. MARQUEZ, A.; DJELOUADJI, Z.; LATTARD, V.; KODJO, A. 2017. Overview of laboratory methods to diagnose Leptospirosis and to identify and to type leptospires. International Microbiology. 20(4):184-193. https://doi.org/10.2436/20.1501.01.302 27. MARTÍNEZ-REINA, A.M.; DORIA-RAMOS, M.; GARCÍA-JIMÉNEZ, J.; SALCEDO-CARRASCAL, E.; HERRERA-PÉREZ, N.; CARRASCAL-TRIANA, E.L. 2020. Caracterización técnica y económica del sistema de producción de búfalos Bubalus bubalis en el departamento de Córdoba de Colombia. Archivos de Zootecnia. 69(268):444-452. https://doi.org/10.21071/az.v69i268.5392 28. MATHIAS, L.A.; GIRIO, R.J.S.; DUARTE, J.M.B. 1999. Serosurvey for Antibodies against Brucella abortus and Leptospira interrogans in pampas deer from Brazil. Journal Wildlife Diseases. 35(1):112-114. https://doi.org/10.7589/0090-3558-35.1.112 29. MOTTA GIRALDO, J.L.; CLAVIJO HOYOS, J.A.; WALTERO GARCÍA, I.; ABELEDO, M.A. 2014. Prevalencia de anticuerpos a Brucella abortus, Leptospira sp. y Neospora caninum en hatos bovinos y bubalinos en el Departamento de Caquetá, Colombia. Revista de Salud Animal. 36(2):80-89. 30. MUSSO, D.; LA SCOLA, B. 2013. Laboratory diagnosis of leptospirosis: a challenge. Journal of Microbiology, Immunology and Infection. 46(4):245-252. https://doi.org/10.1016/j.jmii.2013.03.001 31. NAPOLITANO, F.; PACELLI, C.; GRASSO, F.; BRAGHIERI, A.; DE ROSA, G. 2013. The behavior and welfare of buffaloes (Bubalus bubalis) in modern dairy enterprises. Animal. 7(10):1704-1713. https://doi.org/10.1017/S1751731113001109 32. OCHOA, J.E.; SÁNCHEZ, A.; RUIZ, I. 2000. Epidemiología de la leptospirosis en una zona andina de producción pecuaria. Revista Panamericana de Salud Pública. 7(5):325-331. 33. OLIVEIRA, P.R.F.; SOARES, L.B.F.; BORGES, J.M.; BARROSA, N. DE C.; LANGONI, H.; BRANDESPIM, D.F.; JUNIOR, J.W.P.; MOTA, R.A. 2018. Occurrence of serological reactions for serogroup Sejroe (CTG and Prajtino) in female buffalo in the state of Pernambuco, Brazil. Brazilian Journal of Microbiology. 49(4):795-800. https://doi.org/10.1016/j.bjm.2018.02.007 34. OSPINA-PINTO, M.C.; RINCÓN-PARDO, M.; SOLER-TOVAR, D.; HERNÁNDEZ-RODRÍGUEZ, P. 2019. Alteration of the reproductive indicators by the presence of Leptospira spp. in Sows of Swine Farms. Acta Scientiae Veterinariae. 47:1628. https://doi.org/10.22456/1679-9216.89894 35. PÉREZ-GARCÍA, J.; AGUDELO-FLÓREZ, P.; PARRA-HENAO, G.J.; OCHOA, J.E.; ARBOLEDA, M. 2019. Incidencia y subregistro de casos de leptospirosis diagnosticados con tres métodos diferentes en Urabá, Colombia. Biomédica. 39(Supl.1):150-162. https://doi.org/10.7705/biomedica.v39i0.4577 36. PHILLIPS, J.A. 2019. Leptospirosis. Workplace Health & Safety. 67(3):148. https://doi.org/10.1177/2165079918818582 37. PULIDO-VILLAMARÍN, A.; CASTAÑEDA-SALAZAR, R.; MENDOZA-GÓMEZ, M.F.; VIVAS-DÍAZ, L. 2019. Presencia de anticuerpos frente a algunos patógenos de interés zoonótico en cuatro granjas porcícolas de Cundinamarca, Colombia. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú. 30(1):446-454. http://dx.doi.org/10.15381/rivep.v30i1.15702 38. ROCHA, K. DE S.; DE SOUZA LIMA, M.; SOUZA DA PAZ, G.; LANGONI, H.; GUIMARÃES DE MORAES, C.C. 2019. Detecção de anticorpo anti-Brucella sp. e anti-Leptospira spp. em búfalos (Bubalus bubalis) abatidos em matadouro na cidade de Belém, Pará. Revista de Ciências Agrárias. 62. http://dx.doi.org/10.22491/rca.2019.3046 39. SCHNEIDER, M.C.; NAJERA, P.; PEREIRA, M.M.; MACHADO, G.; DOS ANJOS, C.B.; RODRIGUES, R.O.; CAVAGNI, G.M.; MUÑOZ-ZANZI, C.; CORBELLINI, L.G.; LEONE, M.; BUSS, D.F.; ALDIGHIERI, S.; ESPINAL, M.A. 2015. Leptospirosis in Rio Grande do Sul, Brazil: An Ecosystem Approach in the Animal-Human Interface. PLoS Neglected Tropical Diseases. 9(11):e0004095. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0004095 40. SIMÓN, L.; GALLOSO, M. 2011. Presencia y perspectivas de los búfalos en Cuba. Pastos y Forrajes. 34(1):3-20. 41. VIANA, R.B.; DEL FAVA, C.; MOURA, A.C.B.; CARDOSO, E.C.; DE ARAÚJO, C.V.; MONTEIRO, B.M.; PITUCO, E.M.; VASCONCELLOS, S.A. 2009. Ocorrência de anticorpos anti-neospora caninum, Brucella sp. E Leptospira spp. em búfalos (Bubalus bubalis) criados na amazônia. Arquivos do Instituto Biológico. 76(3):453-457. https://doi.org/10.1590/1808-1657v76p4532009 42. WANG, X.; JIANG, H. 2020. Epidemiological characteristics of global human brucellosis. Chinese Journal of Epidemiology. 41(10):1717-1722. https://doi.org/10.3760/cma.j.cn112338-20191022-00751 43. WORLD HEALTH ORGANIZATION, WHO. 2003. Human leptospirosis: guidance for diagnosis, surveillance and control. World Health Organization (Malta). 109p. 44. ZAKI, A.M.; HOD, R.; SHAMSUSAH, N.A.; ISA, Z.M.; BEJO, S.K.; AGUSTAR, H.K. 2020. Detection of Leptospira kmetyi at recreational areas in Peninsular Malaysia. Environmental Monitoring and Assessment. 192(11):703. https://doi.org/10.1007/s10661-020-08639-x https://revistas.udca.edu.co/index.php/ruadc/article/download/1904/2460 https://revistas.udca.edu.co/index.php/ruadc/article/download/1904/2461 info:eu-repo/semantics/article http://purl.org/coar/resource_type/c_6501 http://purl.org/coar/resource_type/c_1843 info:eu-repo/semantics/publishedVersion http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85 info:eu-repo/semantics/openAccess http://purl.org/coar/access_right/c_abf2 Text Publication |