Prevalencia de fasciolosis bovina en una zona de Caldas Colombia con evidencias de la enfermedad
.
La fasciolosis es una parasitosis que afecta rumiantes, equinos, porcinos, entre otras especies y es causante de grandes pérdidas económicas y puede parasitar humanos. En la presente investigación, se evaluó la frecuencia de la enfermedad por tres métodos de detección, en veintiséis predios, localizados en los municipios del departamento de Caldas, con mayor prevalencia, según reportes de la Central de beneficio de Manizales. Se utilizaron los métodos de coprología, PCR y ELISA, en heces y en suero de bovinos seleccionados aleatoriamente en predios, con el sistema de producción de leche bovina, localizados en los Andes colombianos, entre 1.980-3.721 msnm. Se obtuvieron 414 muestras de materia fecal, procesadas con la técnica Dennis modifica... Ver más
0123-4226
2619-2551
19
2016-06-30
149
154
info:eu-repo/semantics/openAccess
http://purl.org/coar/access_right/c_abf2
id |
metarevistapublica_udca_revistau.d.c.aactualidad_divulgacioncientifica_94_article_119 |
---|---|
record_format |
ojs |
spelling |
Prevalencia de fasciolosis bovina en una zona de Caldas Colombia con evidencias de la enfermedad Prevalence of bovine fasciolosis in a zone of Caldas Colombia with evidences of the disease La fasciolosis es una parasitosis que afecta rumiantes, equinos, porcinos, entre otras especies y es causante de grandes pérdidas económicas y puede parasitar humanos. En la presente investigación, se evaluó la frecuencia de la enfermedad por tres métodos de detección, en veintiséis predios, localizados en los municipios del departamento de Caldas, con mayor prevalencia, según reportes de la Central de beneficio de Manizales. Se utilizaron los métodos de coprología, PCR y ELISA, en heces y en suero de bovinos seleccionados aleatoriamente en predios, con el sistema de producción de leche bovina, localizados en los Andes colombianos, entre 1.980-3.721 msnm. Se obtuvieron 414 muestras de materia fecal, procesadas con la técnica Dennis modificada. El ADN fue extraído de las heces usando un kit comercial y fue amplificado con cebadores específicos, por PCR convencional. En las muestras de suero, se detectó la presencia de inmunoglobulina G (IgG) contra Fasciola hepatica, a través del uso de un Kit comercial, específico para este fin. La región estudiada, se dividió en cuatro zonas, para efectos del estudio. La prevalencia de la fasciolosis por coprología fue 12,3%; por Elisa, 19,1% y por PCR, 67,2%. La zona tres presentó la mayor proporción de animales positivos, por los tres métodos, con odds ratio elevados y alta significancia estadística; fueron hallados caracoles Limneidos en ambientes acuáticos, aptos para su desarrollo, que permiten perpetuar el inóculo. Se confirma la presencia de fasciolosis bovina en la región estudiada y se requieren hacer estudios adicionales, para validar la PCR, como método para la detección de fasciolosis.   Fasciolosis is a parasitic disease that affects ruminants, horses, pigs and other species; it is the cause of significant economic losses and can also parasitize humans. In this research, the frequency of the disease using three detection methods in twenty-six farms, located in the municipalities most prevalent according to reports from the Slaughtering Central of Manizales-Caldas in the department of Caldas was evaluated. The coproscopic, PCR and ELISA methods in feces and serum of randomly selected cattle farms with a system of dairy production, located in the Colombian Andes, between 1980 3721m, were used. 414 stool samples were obtained and processed with the Dennis modified technique. DNA was extracted from stool using a commercial kit and was amplified with specific primers for standard PCR. In serum samples, the presence of immunoglobulin G (IgG) against Fasciola hepatica was detected through the use of a specific commercial kit for this purpose. The study area was divided into four zones for the study purposes. The prevalence of fascioliasis by the coproscopic test was 12.3%, by ELISA of 19.1%, and 67.2% by PCR. Zone three displayed the highest proportion of positive animals by the three methods, with high odds ratio and high statistical significance; lymnaeid snails were found in aquatic environments suitable for development, allowing perpetuate the inoculum. The presence of bovine fasciolosis in the studied region was confirmed; additional studies to validate PCR as a method by the fasciolosis detection are required. Giraldo Pinzón, Etna Pérez Cárdenas, Jorge Aguilar Marín, Sandra Linares Villalba, Sergio PCR Fasciola hepatica caracoles zoonosis Elisa coprología PCR Fasciola hepatica snails zoonoses Elisa coprology 19 1 Núm. 1 , Año 2016 :Revista U.D.C.A Actualidad & Divulgación Científica. Enero - Junio Artículo de revista Journal article 2016-06-30T00:00:00Z 2016-06-30T00:00:00Z 2016-06-30 application/pdf text/html Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales U.D.C.A Revista U.D.C.A Actualidad & Divulgación Científica 0123-4226 2619-2551 https://revistas.udca.edu.co/index.php/ruadc/article/view/119 10.31910/rudca.v19.n1.2016.119 https://doi.org/10.31910/rudca.v19.n1.2016.119 spa https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ 149 154 BECERRA, W. 2001.Consideraciones sobre estrategias sostenibles para el control de Fasciola hepatica en Latinoamérica. Rev. Col. Cienc. Pec. 14(1):28-35. BERNARDO, C.C.; CARNEIRO, M.B.; AVELAR, B.R.; DONATELE, D.M.; MARTINS, I.V.F.; PEREIRA, M.J.S. 2011. Prevalence of liver condemnation due to bovine fasciolosis in southern Espírito Santo: temporal distribution and economic losses. Rev. Bras. Parasitol Vet. 20(1):49-53. BORAY, J.C.; CROWFOOT, P.D.; STRONG, M.B. 1983. Treatment of immature and mature Fasciola hepatica infections in sheep with triclabendazole. Vet. Record. 113(14):315-322. CARON, Y.; MARTENS, K.; LEMPEREUR, L.; SAEGERMAN, C.; LOSSON, B. 2014. New insight in lymnaeid snails (Mollusca, Gastropoda) as intermediate hosts of Fasciola hepatica (Trematoda, Digenea) in Belgium and Luxembourg. Parasites & Vectors. (Reino Unido). 7:66. CARON, Y.; LASRI, S.; LOSSON, B. 2007. Fasciola hepatica: an assessment on the vectorial capacity of Radix labiata and R. balthica commonly found in Belgium. Vet. Parasitol. 149(1-2):95-103. CARON, Y.; RIGHI, S.; LEMPEREUR, L.; SAEGERMAN, C.; LOSSON, B. 2011. An optimized DNA extraction and multiplex PCR for the detection of Fasciola sp. in lymnaeid snails. Vet. Parasitol. 178(1-2):93-99. CASTRO, E.; FREYRE, A.; HERNANDEZ, Z. 2000. Serological responses of cattle after treatment and during natural re-infection with Fasciola hepatica measured using a dot-ELISA system. Vet. Parasitol. 90(3):201- 208. CORREA, S.; MARTÍNEZ, Y.L.; LÓPEZ, J.L.; VELÁSQUEZ, L.E. 2016. Evaluación de la técnica parasitológica Dennis modificada para el diagnóstico de fasciolosis bovina. Biomédica. 36(2) Publicación provisional. CUCHER, M.A.; CARNEVALE, S.; PREPELITCHI, L.; WISNEVESKY-COLLI, C. 2006. PCR diagnosis of Fasciola hepatica in field-collected Lymnaea columella and Lymnaea viatrix snails. Vet. Parasitol. 137(1-2):74-82. DALTON, J.P. 1999. Editor. Epidemiology and control. En: Fasciolosis. Oxford, UK: CABI publ. p.113-149. DENNIS, W.; STONE, W.; SWANSON, L. 1954. A new laboratory and field diagnostic test for fluke ova in feces. Florida Agr. Exp. Station J. Series. 172:47-50. DUTHALER, U.; RINALDI, L.; MAURELLI, M.P.; VARGAS, M.; UTZINGER, J.; CRINGOLI, G.; KEISER J. 2010. Fasciola hepatica: Comparison of the sedimentation and FLOTAC techniques for the detection and quantification of faecal egg counts in rats. Exp. Parasitol. 126(2):161-166. ESTEBAN, J.G.; FLORES, A.; ANGLES, R.; STRAUSS, W.; AGUIRRE, C.; MAS-COMA, S. 1997. A population-based coprological study of human fascioliasis in a hyperendemic area of the Bolivian Altiplano. Trop. Med. Int. Health (Reino Unido). 2(7):695-699. FREDES, F.; SÁNCHEZ, C.; GORMAN, T.; ALCAINO, H. 2001. Purificación de antígenos de Fasciola hepatica mediante electroelución y su aplicación inmunodiagnóstica en la infección animal. Parasitol. Día. (Chile). 25(1-2):19-23. FOX, N.J.; WHITE, P.C.L.; MCCLEAN, C.J.; MARION, G.; EVANS, A.; HUTCHINGS, M.R. 2011. Predicting Impacts of Climate Change on Fasciola hepatica Risk. PLoS ONE 6(1): e16126. GIRALDO, E.J.; ÁLVAREZ, L.M. 2013. Registro de plantas hospederas de caracoles Lymnaeidae (Mollusca: Gastropoda), vectores de Fasciola hepatica (Linnaeus, 1758), en humedales de la región central andina colombiana. Vet. Zoot. 7(2):63-74. GODOY M., Y.; ROQUE L., E.; RODRIGUEZ F., R. 2010. Diagnóstico coproparasitológico de Fasciola hepatica en ganado bovino en una empresa pecuaria cubana. Rev. Inv. Vet. Perú. 21(2):175-179. GORMAN, T.; SÁNCHEZ, R.; FREDES, F.; ALCAINO, H. 1998. Inmunodiagnóstico de fasciolosis bovina mediante ELISA y Western Blot. Parasitol. Día. 22(1- 2):16-22. HASEEB, M.A.; FRIED, B. 1997. Modes of transmissions of trematode infections and their control. In: Fried, B.; Graczyk, T. (Eds). Trematode Biology. CRC Press (Boca Raton). 466p. KAPLAN, R.M.; DAME, J.B.; REDDY, G.R.; COURTNEY, C.H. 1997. The prevalence of Fasciola hepatica in its snail intermediate host determined by DNA probe assay. Int. J. Parasitol (Reino Unido). 27(12):1585-1593. KAPLAN, R.M.; DAME, J.B.; REDDY, G.R.; COURTNEY, C.H. 1995. A repetitive DNA probe for the sensitive detection of Fasciola hepatica infected snails. Int. J. Parasitol. 25:601-610. LÓPEZ, L.P.; ROMERO, J.; VELÁSQUEZ, L.E. 2008. Aislamiento de Paramphistomidae en vacas de leche y en el hospedador intermediario (Lymnaea truncatula y Lymnes columella) en una granja del trópico alto en el occidente de Colombia. Rev. Col. Cienc. Pec. 21(1):9-18. MALONE, J.B.; YILMA, J.M. 1999. Predicting outbreaks of fasciolosis: from ollerenshaw to satellites. In: Dalton, J.P. (ed.). Fasciolosis. Dublin: School of Biotechnology. p.151-182. MARCOS, L.A.; TERASHIMA, A. 2007. Update on human fascioliasis in Peru: Diagnosis, treatment and clinical classification proposal. Neotrop. Helminthol. (Perú). 1(2):85-104. MAS-COMA, S.; ANGLES, R.; ESTEBAN, J.G.; BUCHON, P.; FRANKEN, M.; SATRAUSS, W. 1999. The Northern Bolivian Altiplano: a region highly endemic for human fascioliasis. Trop. Med. Int. Health (Reino Unido). 4(6):454-467. MAS-COMA, S.; VALERO, M.A.; BARGUES, M.D. 2009. Fasciola, lymnaeids and human fascioliasis, with a global overview on disease transmission, epidemiology, evolutionary genetics, molecular epidemiology and control. Adv. Parasitol. 69:41-146. PINHEIRO, J.; MALDONADO, A.J.; ATTIAS, M.; LANFREDI, R.M. 2004. Morphology of the rediae of Echinostoma paraensei (Trematoda: Echinostomatidae) from its intermediate host Lymnaea columella (Mollusca, Gastropoda). Parasitology research (Alemania). 93(3):171-177. PREPELITCHI, L.; PIETROKOVSKY, S.; KLEIMAN, F.; RUBEL, D.; ISSIA, L.; MORIENA, R.; RACIOPPI, O.; ÁLVAREZ, J.; WISNIVESKY-COLLI, C. 2011. Population structure and dynamics of Lymnaea columella (Say, 1817) (Gastropoda: Lymnaeidae) in wetlands of northeastern Argentina. Zool. Studies (Taiwan). 50(2):164-176. PULIDO, A.; CASTAÑEDA, R.; ARBELÁEZ, G. 2010. Fasciolosis hepática, pedagogía de diagnóstico por laboratorio y su situación en Colombia. REDVET. 12:1-11. RABINOVICH, J.E. 1980. Introducción a la ecología de Poblaciones Animales. México. Editorial Continental S.A. 313p. RECALDE-REYES, D.P.; PADILLA SANABRIA, L.; GIRALDO GIRALDO, M.I.; TORO SEGOVIA, L.J.; GONZALEZ, M.M.; CASTAÑO OSORIO, J.C. 2014. Prevalencia de Fasciola hepatica, en humanos y bovinos en el departamento del Quindío-Colombia 2012- 2013. Infectio (Colombia). 18(4):153-157. SALIMI-BEJESTANI, M.R.; MCGARRY, J.W.; FELSTEAD, S.; ORTIZ, P.; AKCA, A.; WILLIAMS, D.J. 2005. Development of an antibody-detection ELISA for Fasciola hepatica and its evaluation against a commercially available test. Res. Vet. Sci. 78:177-181. TICONA, D.S.; CHÁVEZ, A.; CASAS, G.; CHAVERA, C.A.; LI, E.O. 2010. Prevalencia de Fasciola hepatica en bovinos y ovinos de Vilcashuamán, Ayacucho. Rev. Inv. Vet. Perú. 21:168-174. URQUHART, G.M.; ARMOUR, J.; DUNCAN, J.; DUNN, A.M.; JENNINGS, F.W. 2001. Parasitologia Veterinaria. Editorial Acribia S.A. Segunda Edición. Zaragoza: Impreso en Grafic Rm Color. S.L. p.115-130. VALENCIA, M.N.; PARIONA D., A.; HUAMÁN A., M.; MIRANDA M., F.; QUINTANILLA C., S.; GONZALES A., A. 2005. Seroprevalencia de fasciolosis en escolares y en ganado vacuno en la provincia de Huancavelica, Perú. Rev. Peru Med. Exp. Salud Públ. 22(2):96-102. VALENCIA-LÓPEZ, N.; MALONE, J.B.; CARMONA, C.G.; VELÁSQUEZ, L.E. 2012. Climate-based risk models for Fasciola hepatica in Colombia. Geospat Health. 6(3):67-85. VELÁSQUEZ, L.E. 2006. Synonymy between Lymnaea bogotensis Pilsbry, 1935 and Lymnaea cousini Jousseaume, 1887 (Gastropoda: Lymnaeidae). Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 101(7):795-799. WILCHES, C.; JARAMILLO, J.G.; MUÑOZ, D.L.; ROBLEDO, S.M.; VÉLEZ, I.D. 2009. Presencia de infestación por Fasciola hepatica en habitantes del valle de San Nicolás, oriente antioqueño. Infectio 13(2):92- 99. https://revistas.udca.edu.co/index.php/ruadc/article/download/119/88 https://revistas.udca.edu.co/index.php/ruadc/article/download/119/1318 info:eu-repo/semantics/article http://purl.org/coar/resource_type/c_6501 http://purl.org/coar/resource_type/c_1843 info:eu-repo/semantics/publishedVersion http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85 info:eu-repo/semantics/openAccess http://purl.org/coar/access_right/c_abf2 Text Publication |
institution |
UNIVERSIDAD DE CIENCIAS APLICADAS Y AMBIENTALES |
thumbnail |
https://nuevo.metarevistas.org/UNIVERSIDADDECIENCIASAPLICADASYAMBIENTALES/logo.png |
country_str |
Colombia |
collection |
Revista U.D.C.A Actualidad & Divulgación Científica |
title |
Prevalencia de fasciolosis bovina en una zona de Caldas Colombia con evidencias de la enfermedad |
spellingShingle |
Prevalencia de fasciolosis bovina en una zona de Caldas Colombia con evidencias de la enfermedad Giraldo Pinzón, Etna Pérez Cárdenas, Jorge Aguilar Marín, Sandra Linares Villalba, Sergio Fasciola hepatica caracoles zoonosis Elisa coprología Fasciola hepatica snails zoonoses Elisa coprology |
title_short |
Prevalencia de fasciolosis bovina en una zona de Caldas Colombia con evidencias de la enfermedad |
title_full |
Prevalencia de fasciolosis bovina en una zona de Caldas Colombia con evidencias de la enfermedad |
title_fullStr |
Prevalencia de fasciolosis bovina en una zona de Caldas Colombia con evidencias de la enfermedad |
title_full_unstemmed |
Prevalencia de fasciolosis bovina en una zona de Caldas Colombia con evidencias de la enfermedad |
title_sort |
prevalencia de fasciolosis bovina en una zona de caldas colombia con evidencias de la enfermedad |
title_eng |
Prevalence of bovine fasciolosis in a zone of Caldas Colombia with evidences of the disease |
description |
La fasciolosis es una parasitosis que afecta rumiantes, equinos, porcinos, entre otras especies y es causante de grandes pérdidas económicas y puede parasitar humanos. En la presente investigación, se evaluó la frecuencia de la enfermedad por tres métodos de detección, en veintiséis predios, localizados en los municipios del departamento de Caldas, con mayor prevalencia, según reportes de la Central de beneficio de Manizales. Se utilizaron los métodos de coprología, PCR y ELISA, en heces y en suero de bovinos seleccionados aleatoriamente en predios, con el sistema de producción de leche bovina, localizados en los Andes colombianos, entre 1.980-3.721 msnm. Se obtuvieron 414 muestras de materia fecal, procesadas con la técnica Dennis modificada. El ADN fue extraído de las heces usando un kit comercial y fue amplificado con cebadores específicos, por PCR convencional. En las muestras de suero, se detectó la presencia de inmunoglobulina G (IgG) contra Fasciola hepatica, a través del uso de un Kit comercial, específico para este fin. La región estudiada, se dividió en cuatro zonas, para efectos del estudio. La prevalencia de la fasciolosis por coprología fue 12,3%; por Elisa, 19,1% y por PCR, 67,2%. La zona tres presentó la mayor proporción de animales positivos, por los tres métodos, con odds ratio elevados y alta significancia estadística; fueron hallados caracoles Limneidos en ambientes acuáticos, aptos para su desarrollo, que permiten perpetuar el inóculo. Se confirma la presencia de fasciolosis bovina en la región estudiada y se requieren hacer estudios adicionales, para validar la PCR, como método para la detección de fasciolosis.
 
|
description_eng |
Fasciolosis is a parasitic disease that affects ruminants, horses, pigs and other species; it is the cause of significant economic losses and can also parasitize humans. In this research, the frequency of the disease using three detection methods in twenty-six farms, located in the municipalities most prevalent according to reports from the Slaughtering Central of Manizales-Caldas in the department of Caldas was evaluated. The coproscopic, PCR and ELISA methods in feces and serum of randomly selected cattle farms with a system of dairy production, located in the Colombian Andes, between 1980 3721m, were used. 414 stool samples were obtained and processed with the Dennis modified technique. DNA was extracted from stool using a commercial kit and was amplified with specific primers for standard PCR. In serum samples, the presence of immunoglobulin G (IgG) against Fasciola hepatica was detected through the use of a specific commercial kit for this purpose. The study area was divided into four zones for the study purposes. The prevalence of fascioliasis by the coproscopic test was 12.3%, by ELISA of 19.1%, and 67.2% by PCR. Zone three displayed the highest proportion of positive animals by the three methods, with high odds ratio and high statistical significance; lymnaeid snails were found in aquatic environments suitable for development, allowing perpetuate the inoculum. The presence of bovine fasciolosis in the studied region was confirmed; additional studies to validate PCR as a method by the fasciolosis detection are required.
|
author |
Giraldo Pinzón, Etna Pérez Cárdenas, Jorge Aguilar Marín, Sandra Linares Villalba, Sergio |
author_facet |
Giraldo Pinzón, Etna Pérez Cárdenas, Jorge Aguilar Marín, Sandra Linares Villalba, Sergio |
topicspa_str_mv |
Fasciola hepatica caracoles zoonosis Elisa coprología |
topic |
Fasciola hepatica caracoles zoonosis Elisa coprología Fasciola hepatica snails zoonoses Elisa coprology |
topic_facet |
Fasciola hepatica caracoles zoonosis Elisa coprología Fasciola hepatica snails zoonoses Elisa coprology |
citationvolume |
19 |
citationissue |
1 |
citationedition |
Núm. 1 , Año 2016 :Revista U.D.C.A Actualidad & Divulgación Científica. Enero - Junio |
publisher |
Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales U.D.C.A |
ispartofjournal |
Revista U.D.C.A Actualidad & Divulgación Científica |
source |
https://revistas.udca.edu.co/index.php/ruadc/article/view/119 |
language |
spa |
format |
Article |
rights |
https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ info:eu-repo/semantics/openAccess http://purl.org/coar/access_right/c_abf2 |
references |
BECERRA, W. 2001.Consideraciones sobre estrategias sostenibles para el control de Fasciola hepatica en Latinoamérica. Rev. Col. Cienc. Pec. 14(1):28-35. BERNARDO, C.C.; CARNEIRO, M.B.; AVELAR, B.R.; DONATELE, D.M.; MARTINS, I.V.F.; PEREIRA, M.J.S. 2011. Prevalence of liver condemnation due to bovine fasciolosis in southern Espírito Santo: temporal distribution and economic losses. Rev. Bras. Parasitol Vet. 20(1):49-53. BORAY, J.C.; CROWFOOT, P.D.; STRONG, M.B. 1983. Treatment of immature and mature Fasciola hepatica infections in sheep with triclabendazole. Vet. Record. 113(14):315-322. CARON, Y.; MARTENS, K.; LEMPEREUR, L.; SAEGERMAN, C.; LOSSON, B. 2014. New insight in lymnaeid snails (Mollusca, Gastropoda) as intermediate hosts of Fasciola hepatica (Trematoda, Digenea) in Belgium and Luxembourg. Parasites & Vectors. (Reino Unido). 7:66. CARON, Y.; LASRI, S.; LOSSON, B. 2007. Fasciola hepatica: an assessment on the vectorial capacity of Radix labiata and R. balthica commonly found in Belgium. Vet. Parasitol. 149(1-2):95-103. CARON, Y.; RIGHI, S.; LEMPEREUR, L.; SAEGERMAN, C.; LOSSON, B. 2011. An optimized DNA extraction and multiplex PCR for the detection of Fasciola sp. in lymnaeid snails. Vet. Parasitol. 178(1-2):93-99. CASTRO, E.; FREYRE, A.; HERNANDEZ, Z. 2000. Serological responses of cattle after treatment and during natural re-infection with Fasciola hepatica measured using a dot-ELISA system. Vet. Parasitol. 90(3):201- 208. CORREA, S.; MARTÍNEZ, Y.L.; LÓPEZ, J.L.; VELÁSQUEZ, L.E. 2016. Evaluación de la técnica parasitológica Dennis modificada para el diagnóstico de fasciolosis bovina. Biomédica. 36(2) Publicación provisional. CUCHER, M.A.; CARNEVALE, S.; PREPELITCHI, L.; WISNEVESKY-COLLI, C. 2006. PCR diagnosis of Fasciola hepatica in field-collected Lymnaea columella and Lymnaea viatrix snails. Vet. Parasitol. 137(1-2):74-82. DALTON, J.P. 1999. Editor. Epidemiology and control. En: Fasciolosis. Oxford, UK: CABI publ. p.113-149. DENNIS, W.; STONE, W.; SWANSON, L. 1954. A new laboratory and field diagnostic test for fluke ova in feces. Florida Agr. Exp. Station J. Series. 172:47-50. DUTHALER, U.; RINALDI, L.; MAURELLI, M.P.; VARGAS, M.; UTZINGER, J.; CRINGOLI, G.; KEISER J. 2010. Fasciola hepatica: Comparison of the sedimentation and FLOTAC techniques for the detection and quantification of faecal egg counts in rats. Exp. Parasitol. 126(2):161-166. ESTEBAN, J.G.; FLORES, A.; ANGLES, R.; STRAUSS, W.; AGUIRRE, C.; MAS-COMA, S. 1997. A population-based coprological study of human fascioliasis in a hyperendemic area of the Bolivian Altiplano. Trop. Med. Int. Health (Reino Unido). 2(7):695-699. FREDES, F.; SÁNCHEZ, C.; GORMAN, T.; ALCAINO, H. 2001. Purificación de antígenos de Fasciola hepatica mediante electroelución y su aplicación inmunodiagnóstica en la infección animal. Parasitol. Día. (Chile). 25(1-2):19-23. FOX, N.J.; WHITE, P.C.L.; MCCLEAN, C.J.; MARION, G.; EVANS, A.; HUTCHINGS, M.R. 2011. Predicting Impacts of Climate Change on Fasciola hepatica Risk. PLoS ONE 6(1): e16126. GIRALDO, E.J.; ÁLVAREZ, L.M. 2013. Registro de plantas hospederas de caracoles Lymnaeidae (Mollusca: Gastropoda), vectores de Fasciola hepatica (Linnaeus, 1758), en humedales de la región central andina colombiana. Vet. Zoot. 7(2):63-74. GODOY M., Y.; ROQUE L., E.; RODRIGUEZ F., R. 2010. Diagnóstico coproparasitológico de Fasciola hepatica en ganado bovino en una empresa pecuaria cubana. Rev. Inv. Vet. Perú. 21(2):175-179. GORMAN, T.; SÁNCHEZ, R.; FREDES, F.; ALCAINO, H. 1998. Inmunodiagnóstico de fasciolosis bovina mediante ELISA y Western Blot. Parasitol. Día. 22(1- 2):16-22. HASEEB, M.A.; FRIED, B. 1997. Modes of transmissions of trematode infections and their control. In: Fried, B.; Graczyk, T. (Eds). Trematode Biology. CRC Press (Boca Raton). 466p. KAPLAN, R.M.; DAME, J.B.; REDDY, G.R.; COURTNEY, C.H. 1997. The prevalence of Fasciola hepatica in its snail intermediate host determined by DNA probe assay. Int. J. Parasitol (Reino Unido). 27(12):1585-1593. KAPLAN, R.M.; DAME, J.B.; REDDY, G.R.; COURTNEY, C.H. 1995. A repetitive DNA probe for the sensitive detection of Fasciola hepatica infected snails. Int. J. Parasitol. 25:601-610. LÓPEZ, L.P.; ROMERO, J.; VELÁSQUEZ, L.E. 2008. Aislamiento de Paramphistomidae en vacas de leche y en el hospedador intermediario (Lymnaea truncatula y Lymnes columella) en una granja del trópico alto en el occidente de Colombia. Rev. Col. Cienc. Pec. 21(1):9-18. MALONE, J.B.; YILMA, J.M. 1999. Predicting outbreaks of fasciolosis: from ollerenshaw to satellites. In: Dalton, J.P. (ed.). Fasciolosis. Dublin: School of Biotechnology. p.151-182. MARCOS, L.A.; TERASHIMA, A. 2007. Update on human fascioliasis in Peru: Diagnosis, treatment and clinical classification proposal. Neotrop. Helminthol. (Perú). 1(2):85-104. MAS-COMA, S.; ANGLES, R.; ESTEBAN, J.G.; BUCHON, P.; FRANKEN, M.; SATRAUSS, W. 1999. The Northern Bolivian Altiplano: a region highly endemic for human fascioliasis. Trop. Med. Int. Health (Reino Unido). 4(6):454-467. MAS-COMA, S.; VALERO, M.A.; BARGUES, M.D. 2009. Fasciola, lymnaeids and human fascioliasis, with a global overview on disease transmission, epidemiology, evolutionary genetics, molecular epidemiology and control. Adv. Parasitol. 69:41-146. PINHEIRO, J.; MALDONADO, A.J.; ATTIAS, M.; LANFREDI, R.M. 2004. Morphology of the rediae of Echinostoma paraensei (Trematoda: Echinostomatidae) from its intermediate host Lymnaea columella (Mollusca, Gastropoda). Parasitology research (Alemania). 93(3):171-177. PREPELITCHI, L.; PIETROKOVSKY, S.; KLEIMAN, F.; RUBEL, D.; ISSIA, L.; MORIENA, R.; RACIOPPI, O.; ÁLVAREZ, J.; WISNIVESKY-COLLI, C. 2011. Population structure and dynamics of Lymnaea columella (Say, 1817) (Gastropoda: Lymnaeidae) in wetlands of northeastern Argentina. Zool. Studies (Taiwan). 50(2):164-176. PULIDO, A.; CASTAÑEDA, R.; ARBELÁEZ, G. 2010. Fasciolosis hepática, pedagogía de diagnóstico por laboratorio y su situación en Colombia. REDVET. 12:1-11. RABINOVICH, J.E. 1980. Introducción a la ecología de Poblaciones Animales. México. Editorial Continental S.A. 313p. RECALDE-REYES, D.P.; PADILLA SANABRIA, L.; GIRALDO GIRALDO, M.I.; TORO SEGOVIA, L.J.; GONZALEZ, M.M.; CASTAÑO OSORIO, J.C. 2014. Prevalencia de Fasciola hepatica, en humanos y bovinos en el departamento del Quindío-Colombia 2012- 2013. Infectio (Colombia). 18(4):153-157. SALIMI-BEJESTANI, M.R.; MCGARRY, J.W.; FELSTEAD, S.; ORTIZ, P.; AKCA, A.; WILLIAMS, D.J. 2005. Development of an antibody-detection ELISA for Fasciola hepatica and its evaluation against a commercially available test. Res. Vet. Sci. 78:177-181. TICONA, D.S.; CHÁVEZ, A.; CASAS, G.; CHAVERA, C.A.; LI, E.O. 2010. Prevalencia de Fasciola hepatica en bovinos y ovinos de Vilcashuamán, Ayacucho. Rev. Inv. Vet. Perú. 21:168-174. URQUHART, G.M.; ARMOUR, J.; DUNCAN, J.; DUNN, A.M.; JENNINGS, F.W. 2001. Parasitologia Veterinaria. Editorial Acribia S.A. Segunda Edición. Zaragoza: Impreso en Grafic Rm Color. S.L. p.115-130. VALENCIA, M.N.; PARIONA D., A.; HUAMÁN A., M.; MIRANDA M., F.; QUINTANILLA C., S.; GONZALES A., A. 2005. Seroprevalencia de fasciolosis en escolares y en ganado vacuno en la provincia de Huancavelica, Perú. Rev. Peru Med. Exp. Salud Públ. 22(2):96-102. VALENCIA-LÓPEZ, N.; MALONE, J.B.; CARMONA, C.G.; VELÁSQUEZ, L.E. 2012. Climate-based risk models for Fasciola hepatica in Colombia. Geospat Health. 6(3):67-85. VELÁSQUEZ, L.E. 2006. Synonymy between Lymnaea bogotensis Pilsbry, 1935 and Lymnaea cousini Jousseaume, 1887 (Gastropoda: Lymnaeidae). Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 101(7):795-799. WILCHES, C.; JARAMILLO, J.G.; MUÑOZ, D.L.; ROBLEDO, S.M.; VÉLEZ, I.D. 2009. Presencia de infestación por Fasciola hepatica en habitantes del valle de San Nicolás, oriente antioqueño. Infectio 13(2):92- 99. |
type_driver |
info:eu-repo/semantics/article |
type_coar |
http://purl.org/coar/resource_type/c_6501 |
type_version |
info:eu-repo/semantics/publishedVersion |
type_coarversion |
http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85 |
type_content |
Text |
publishDate |
2016-06-30 |
date_accessioned |
2016-06-30T00:00:00Z |
date_available |
2016-06-30T00:00:00Z |
url |
https://revistas.udca.edu.co/index.php/ruadc/article/view/119 |
url_doi |
https://doi.org/10.31910/rudca.v19.n1.2016.119 |
issn |
0123-4226 |
eissn |
2619-2551 |
doi |
10.31910/rudca.v19.n1.2016.119 |
citationstartpage |
149 |
citationendpage |
154 |
url2_str_mv |
https://revistas.udca.edu.co/index.php/ruadc/article/download/119/88 |
url3_str_mv |
https://revistas.udca.edu.co/index.php/ruadc/article/download/119/1318 |
_version_ |
1811201115532820480 |